produksi ternak unggas

6 Okt

PENGARUH PROGRAM PENYINARAN TERHADAP KINERJA AYAM BROILER DAN RESPON IMUN

 

 

 

 

TUGAS REVIEW PRODKSI TERNAK UNGGAS

 

 

 

 

 

 

Oleh

 

 

ARIF NURROHMAN (23010111120050)

Kode Tugas: 2

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN

UNIVERSITAS DIPONEGORO

SEMARANG

2012

PENDAHULUAN

Selama bertahun-tahun, ayam pedaging biasanya telah dipelihara terus menerus di bawah atau dekat kontinyu fisiologis dan adaptif perubahan perilaku. Periode penyinaran untuk memaksimalkan konsumsi pakan dan tingkat pertumbuhan. Namun, beberapa penyelidikan menunjukkan bahwa penggunaan program cahaya kontinyu menginduksi kurang tidur dan penyebab memutuskan respon stres fisiologis (Campo dan Davila, 2002;. Kliger et al, 2000). Oleh karena itu, Sebagian besar penelitian baru-baru ini telah berfokus pada membatasi rejimen cahaya untuk meningkatkan produktivitas broiler ayam karena aktivitas fisik sangat rendah selama kegelapan dan pengeluaran energi dari aktivitas cukup (Rahimi et al., 2005). Melatonin menstimulasi proliferasi limfosit (Kliger et al., 2000), produksi antibodi (Ahmed Abbas et al, 2007.) dan Interleukin 2 (IL-2) dan interferon-((IFN-() (Garcia- Maurino et al, 1997.). Baru-baru ini pendekatan dalam memahami mekanisme kelenjar pineal pengaturan fungsi imun telah berfokus pada kedua periode penyinaran atau panjang hari. Terang-gelap rangsangan menyediakan informasi yang memadai yang diperlukan untuk lingkungan Meningkatkan periode bergeser dalam program unggas cahaya adalah dilaporkan memiliki efek imunomodulator positif. Kliger et al. (2000) melaporkan bahwa menggunakan intermiten bukannya program lampu non-intermiten terbatas dapat memiliki efek meningkatkan kekebalan pada ayam broiler. Arus Penyelidikan dilakukan untuk mengatasi efek berbeda fotoperiodik rejimen pada kekebalan tanggapan pola dan kinerja produksi broiler ayam.

 

 

 

MATERI DAN METODE

Hewan: Anak ayam pedaging jantan berumur digunakan dalam penelitian ini dan disimpan selama 6 minggu. Para anak ayam yang bertempat di lantai, dengan makanan dan air yang tersedia. Eksperimental desain: Tiga ratus anak ayam broiler yang dibagi secara acak menjadi tiga kelompok yang sama. Dalam setiap kelompok, anak ayam ditempatkan di 10 pena dari 10 anak ayam di dicampur 1:1 dengan media mencuci, RPMI 1640 dengan L- pena masing-masing. Semua kelompok menerima 24-jam pencahayaan untuk 3 hari pertama. Pada hari keempat, kelompok pertama terkena terus menerus cahaya (23L: 1D) dan menjabat sebagai kontrol. Kelompok kedua menerima cahaya non-intermiten terbatas (12L: 12D), sedangkan kelompok ketiga menerima intermiten cahaya (2L: 2D) selama periode yang sama sampai akhir eksperimen. Sebuah suhu merenung dari 33  adalah dipertahankan selama 3 hari dan kemudian dikurangi menjadi 30  untuk sisa minggu pertama.

Berat badan, konsumsi pakan dan konversi pakan: Berat badan individu ditentukan pada hari ke 0, 21 dan 42 tua dan anak ayam sama. Tingkat kematian: Kematian dicatat setiap hari dan posting mortem dilakukan. Darah sampel: Pada 6 minggu, sampel darah yang diambil dari vena brachialis dengan jarum suntik dibilas dengan heparin solusi. Setengah ml dari sampel darah yang digunakan langsung untuk mengukur leukosit total dan Hetrophil untuk rasio limfosit, 2,5 ml masing-masing, disentrifugasi untuk panen plasma, yang disimpan pada 20  sampai diuji. Secara singkat, 490μ / cemerlang cresly blue dye adalah dicampur dengan 10μ / seluruh sampel darah dan total leukosit dihitung menggunakan hemositometer a. Hormonal assay: hormon corticosterone dan tiroid diukur dengan menggunakan radioimmunoassay (RIA) kit (Gehad et al., 2002). Heterophil rasio limfosit (H / L): Satu tetes darah itu dioleskan pada slide kaca. Smear yang tetap dan bernoda menggunakan Hema-3 (Fisher Sains). Satu ratus leukosit dihitung pada satu slide untuk setiap burung dan heterophil rasio limfosit dihitung. Antibodi titer: Pada usia 5 minggu, 10 ayam pedaging dari setiap perawatan ringan disuntik dengan 0.2ml dari 5% sel darah merah (SRBC). Satu minggu kemudian, sampel darah dikumpulkan dan titer antibodi terhadap SRBC adalah ditentukan menggunakan teknik microhemagylutination (Kirby dan Froman, 1991). Dimediasi sel respon imun Proliferasi assay untuk limfosit T dan B: Secara singkat, 10 sampel darah dikumpulkan dari setiap perlakuan dan glutamin dilengkapi dengan penisilin (100 unit / ml) / streptomisin (100 mg / ml). Suspensi sel kemudian berlapis ke histopaque 1077 dan disentrifugasi pada 220 xg selama 30 menit untuk memisahkan leukosit. Itu darah lapisan sel putih telah dihapus dan dicuci dua kali. Leulocytes disesuaikan dengan 1 x 10 sel layak / ml dalam 7 RPMI 1640 dengan 10% panas-diaktifkan serum janin sapi (GBS). Dengan menggunakan pengecualian tripan biru, kelangsungan hidup sel adalah ditambang menjadi = 95% untuk suspensi sel darah putih. Leukosit yang berlapis dalam budaya rangkap tiga pada 5 x 10 5 limfosit / baik di 96-well, alas bulat piring. Masing-masing baik terkandung leukosit dalam 50 uL media. Lima puluh uL baik concanavalin-A mitogen (Con-A) atau Pokeweed (PWM) (50 pg / ml) ditambahkan, sementara kontrol sumur menerima 50 uL RPMI FBS 1.640 10%. Kultur diinkubasi selama 48 jam pada 42 C dalam CO 5%. o 2 Setelah inkubasi, 50 uL H-timidin (2 μci / baik) 3 ditambahkan ke setiap sumur. Delapan belas jam kemudian, Kultur dipanen pada kertas fiber glass filter. H- 3 serapan timidin diukur sebagai hitungan per menit. (Cpm) menggunakan scintillation counter untuk menentukan T-cell proliferasi. Cpm bersih diperoleh dengan mengurangkan mean cpm dari sumur kontrol dari cpm rata-rata yang sesuai mitogen sumur.

Analisis statistik: Model linier umum prosedur SAS software yang digunakan untuk menganalisis data dengan satu-cara analisis varians (ketika efek dari fotoperiode pada produksi dan fisiologis parameter adalah efek utama) (SAS Institute, 1996). Berarti dipisahkan menggunakan Duncan multiple-range Uji signifikansi dengan set pada P <0,05.

 

 

 

HASIL DAN PEMBAHASAN

Kekebalan yang dimediasi sel respon: Paparan berselang cahaya rejimen signifikan diinduksi stimulasi dari kedua proliferasi sel T-limfosit di Menanggapi con-A mitogen dan B-limfosit sel proliferasi dalam menanggapi PWM mitogen dibandingkan dengan kelompok jadwal lainnya cahaya. Di sisi lain, jadwal cahaya non-intermiten terbatas tidak memiliki efek signifikan terhadap proliferasi T-sel atau sel-B dibandingkan dengan kontrol. Dalam penelitian ini, berselang pencahayaan ditemukan untuk meningkatkan mitogen-limfosit proliferasi pada 6 wks. Hasil ini didukung oleh Kliger et al. (2000), yang melaporkan bahwa peningkatan periode gelap dirangsang mitogen-induced splenocyte proliferasi. Hal ini bisa jadi karena melatonin ditingkatkan sekresi selama periode gelap (Maestroni, 1998ab dan Abbas et al, 2007.). Kliger et al. (2000) menemukan bahwa melatonin dalam darah perifer dan ditingkatkan vitro limpa proliferasi limfosit setelah stimulasi dengan Con A dan PWM Champney et al. (1997) menyarankan melatonin yang tidak proporsional dapat mengubah jumlah darah dan limpa T dan B-limfosit, atau dapat memodifikasi efek dari program cahaya pada proliferasi Limfosit dalam menanggapi (A) Con Amitogen dan (B) PWM mitogen pada ayam broiler jantan pada usia 6 minggu. Bar adalah sarana ± SE.Bardenganhuruf yang sama, tidak berbeda secara signifikan (p <0,05). Bar adalah sarana ± SE. Bar dengan huruf umum tidak berbeda nyata (p <0,05) (n = 10) aktivitas intrinsik mitogen limfosit masing-masing. Selain itu, melatonin mungkin dapat meningkatkan limfosit proliferasi oleh sintesis dan meningkatkan sekresi IL-2 dan IFN ((Garcia-Mauriño et al., 1997) dengan mengaktifkan T helper-1 sel (Maestroni, 1998b). Champney et al. (1998) menemukan peningkatan serum IFN ( tingkat pada hamster Suriah setelah injeksi melatonin. Juga, Maestroni et al. (1987) menyarankan bahwa melatonin mempengaruhi respon kekebalan tubuh melalui opiatergic mekanisme. Penjelasan lain yang ditawarkan oleh Kuhlwein dan Irwin (2001). Mereka menunjukkan bahwa meningkatkan proliferasi limfosit dalam menanggapi pemberian dosis fisiologis melatonin dapat mungkin disebabkan oleh penurunan dalam produksi sitokin penghambatan IL-10. Titer antibodi dan sel darah putih Total perbedaan titer antibodi dalam non-intermiten kelompok cahaya terbatas atau kelompok cahaya kontinyu tidak signifikan. Namun, nilai tertinggi titer antibodi diperoleh secara signifikan pada kelompok yang menerima program lampu intermiten dibandingkan dengan dua lainnya kelompok yang menerima cahaya non-intermiten atau dibatasi cahaya kontinyu. Selain itu, ayam terkena program lampu non-intermiten terbatas telah WBC keseluruhan secara signifikan lebih rendah dibandingkan dengan intermiten cahaya group atau kelompok cahaya kontinyu. Selain itu, total WBC secara signifikan lebih tinggi di kelompok cahaya intermiten dibandingkan dengan kontrol. Cahaya intermiten program, dalam studi ini, antibodi ditingkatkan produksi dan induksi diinduksi Total WBC menghitung secara signifikan dibandingkan dengan kontrol. Hal ini bisa disebabkan tingkat melatonin meningkat kegelapan seperti dilansir Abbas et al. (2007). Efeknya melatonin pada fungsi kekebalan mungkin langsung melalui melatonin reseptor yang terletak pada jaringan kekebalan tubuh, termasuk WBC (Calvo et al., 1995), atau mungkin tidak langsung dengan bertindak melalui hormon endokrin lainnya, yang paling terutama hormon tiroid (Poon et al., 1994). Selain itu, Mahmoud dkk. (1994) melaporkan bahwa program lampu intermiten menyebabkan hipertrofi dan peningkatan ularity sel timus. Selain itu, Raghavendra et al. (2001) menemukan bahwa kronis administrasi melatonin mengaktifkan T helper-2 respon. T helper-2 sitokin meningkatkan aktivasi sel B dan meningkatkan produksi antibodi (Kuby, 2000). Efek negatif dari cahaya non-intermiten terbatas rejimen pada respon kekebalan tubuh bisa disebabkan corticosterone. Data menunjukkan bahwa non-intermiten perawatan ringan terbatas disebabkan ketinggian plasma corticosterone. Melalui mekanisme yang corticosterone menekan aktivitas kekebalan bisa karena memulai kematian limfosit terprogram dan mendorong fragmentasi DNA sel yang mengarah ke kematian sel (Cohen dan Duke, 1984). Trout et al. (1996) menunjukkan bahwa baik suntikan ACTH dan stres panas. Bar adalah sarana ± SE. Bar denganumum efek dari melatonin konsentrasi hormon leptin. surat tidak berbeda secara signifikan (p <0,05) (Abbas et al. (2007) menunjukkan bahwa perioe gelap meningkat = 10) merangsang melatonin produksi. Selain itu, menyebabkan penurunan signifikan persentase meningkatkan konsentrasi plasma leptin. Selain itu, CD3, CD4 dan CD8 limfosit dalam darah. Memang, Legradi et al. (1997) menemukan bahwa leptin meningkatkan tingkat eksperimen dengan mamalia telah menunjukkan bahwa kedua B serum tiroksin (T) dan melepaskan prothyrotropin dan limfosit T menurun dalam sirkulasi Hormon mR.NA setelah pengobatan glukokortikoid (Fauci, 1975). Glukokortikoid telah dilaporkan menyebabkanre- Berat badan: Pada 3 minggu usia, tidak ada yang signifikan distribusi limfositdari sirkulasi ke perbedaan dalam berat badan antara semua perlakuan sekunder limfoidjaringan (Fauci, 1975). Pada usia 6 minggu, paparan non- Heterophil rasio limfosit (H / L): Hasil signifikan dibandingkan dengan dua program cahaya lain. Penelitian ini menunjukkan bahwa non-intermiten dibatasi Panjang periode gelap dalam non-intermiten terbatas lampu rejimen elevasi diinduksi H / L rasio, Program plasma 12 jam, bisa menjadi stres dan faktor utama corticosterone konsentrasi, sementara cahaya intermiten menginduksi elevasi di tingkat corticosterone. Corticosterone rejimen tidak berpengaruh signifikan pada parameter adalah pemain kunci dalam meningkatkan sitokin pro-inflamasi. Dibandingkan dengan kontrol. Siegel (1980) menemukan bahwa Johnson (1997) melaporkan bahwa pro-inflamasi stres biasanya menyebabkan ketinggian H / L rasio karena adanya sitokin, Il-1, Il-6 dan TNF “, menghambat pertumbuhan dengan induksi heterophil dan pengurangan limfosit. modulasi itu perantara metabolisme dari Oleh karena itu, H / L rasio dapat digunakan sebagai indikator yang baik karbohidrat, lemak dan protein substrat. Terlebih lagi, tubuh stres. Rasio H / L lebih tinggi, burung-burung yang stres lebih berat badan secara signifikan lebih berat dengan rata-rata berada di bawah (Kassab et al., 1992). Mengekspos broiler sampai 12 230g/bird pada kelompok yang menerima intermiten jam kegelapan dalam cahaya non-intermiten terbatas Program dibandingkan dengan kontrol. Hasil ini bisa disebabkan rejimen tampaknya menjadi program stres menyebabkan konsentrasi T plasma, yang secara signifikan elevasi corticosterone. McFarlane dan Curtis (1989) lebih tinggi pada kelompok cahaya intermiten dibandingkan dengan melaporkan bahwa ACTH meningkatkan plasma corticosterone terus terang kelompok. Meskipun intermiten cahaya konsentrasi. Secara umum, HPA axis melibatkan persepsi Program (1L: 3D) dan non-intermiten cahaya terbatas di otak dengan pelepasan hipotalamus CRF dan vasopressin, yang merangsang hipofisis anterior untuk mensekresi ACTH Beredar ACTH menyebabkan adrenal korteks untuk menghasilkan glukokortikoid (Dohms dan Metz, 1991). Di sisi lain, rejimen cahaya terputus-putus tidak berpengaruh signifikan terhadap H / L rasio dan plasma corticosterone konsentrasi. Renden et al. (1994) dikonfirmasi hasil ini dengan melaporkan bahwa corticosterone konsentrasi yang sama pada cahaya kontinyu (23L: 1D) dan perawatan ringan intermiten (1L: 3D). Tiroid: Kedua non-intermiten terbatas dan program cahaya intermiten yang disebabkan peningkatan plasma T dibandingkan dengan kelompok cahaya kontinyu. Itu 3 kelompok cahaya intermiten mencatat paling signifikan dan Mustonen et al. (2000) melaporkan bahwa melatonin 4 cahaya terbatas intermiten mengurangi berat badan. Pengaruh cahaya pada program (A) rasio H / L pada ayam broiler jantan dan (B) plasma corticosterone Hormon konsentrasi dalam ayam broiler pada usia 6 minggu. Bar adalah sarana ± SE. Bar dengan huruf umum tidak berbeda nyata (p <0,05) (n = 10). Pengaruh program cahaya pada plasma hormon tiroid konsentrasi broiler jantan ayam pada usia 6 minggu. Bar berarti ± SE. Bar dengan huruf yang sama, tidak berbeda secara signifikan (p <0,05) (n = 10).. Dalam program cahaya intermiten, ayam pedaging makan kekenyangan pada periode cahaya dan maka memperluas banyak energi selama periode gelap, menyebabkan tubuh lebih besar berat badan (Ingram dan Hatten, 2000). Konsumsi pakan dan pakan konversi: nilai terendah konsumsi pakan diperoleh signifikan dalam suatu non-intermiten kelompok cahaya terbatas dibandingkan dengan kontinu atau intermiten cahaya kelompok. Selain itu, ada Corticosterone konsentrasi. ada perbedaan yang signifikan dari konsumsi pakan antara kelompok cahaya kontinyu dan kelompok intermittent light. Namun, dalam semua perawatan ringan, kelompok cahaya terputus-putus mempunyai konversi pakan terbaik. Nilai diikuti oleh cahaya non-intermiten terbatas kelompok. Hasil ini bisa disebabkan oleh aktivitas fisik yang rendah dan pengeluaran energi dari ayam yang dibesarkan di bawah dibatasi program ringan. Pengurangan aktivitas selama kegelapan dapat mengakibatkan produksi panas lebih rendah dan lebih tinggi efisiensi pakan (Rahimi et al., 2005). Kematian: Meskipun cahaya non-intermiten terbatas tidak berdampak signifikan terhadap angka kematian dibandingkan dengan kelompok terang, regimen intermiten cahaya menurunkan angka kematian sebesar 3 kali lipat. Hasil ini mungkin disebabkan oleh efek dari program lampu intermiten pada perlambatan pertumbuhan Tingkat selama awal kehidupan. Rozenboim et al. (1999) dan Gordon dan Tucker (1995) melaporkan bahwa tingkat kematian dan kejadian kematian mendadak kurang signifikan pada ayam pedaging yang menerima penyinaran pendek atau sedang dibandingkan dengan ayam pedaging menerima cahaya kontinyu jadwal. Selain itu, data yang disajikan dalam arus Penyelidikan menunjukkan bahwa program intermiten cahaya meningkatkan kinerja kekebalan tubuh dengan meningkatkan baik humoral dan diperantarai sel respon, yang merupakan kunci Faktor dalam mengurangi angka kematian.

KESIMPULAN

Hasil dari penyelidikan saat ini menunjukkan bahwa periode penyinaran intermiten meningkatkan fungsi kekebalan tubuh dan produksi kinerja ayam broiler bila dibandingkan dengan terus menerus atau lampu non-intermiten terbatas. Hasil ini menunjukkan peran penting dalam mempengaruhi respon imun dan produksi kinerja. Namun, non-intermiten cahaya terbatas tampaknya menjadi program stres yang menyebabkan ketinggian H / L rasio dan plasma.

 

 

DAFTAR PUSTAKA

Ahmed O. Abbas, E. Ahmed Gehad, L. Gilbert, HendricksIII, H.B.A. Gharib and M. Magdi Mashaly, 2007. TheEffect of Lighting Program and Melatonin on theAlleviation of the Negative Impact of Heat Stress onthe Immune Response in Broiler Chickens. Int. J.Poult. Sci., 9: 651-660.

Aperdoorn, E.J., J.W. Schrama, M.M. Mashaly and H.K. Johnson, R.W., 1997. Inhibition of growth by proParmentier,1999. Effect of melatonin and lightingscheduleon energy metabolism in broiler chickens.Poult.Sci., 78: 223-229.

Calvo, J.R., M.R. El-Idrissi, D. Pozo and J.M. Guerrero,1995. Immunomodulatory role of melatonin: specificbinding sites in human and rodent lymphoid cells.J. Pineal Res., 18: 119.

Campo, J.L. and S.G. Davila, 2002. Effect of photoperiod on Heterophil to lymphocyte ratio and tonic immobility duration of chickens. Poult. Sci., 81: 1637-1639.

Champney, T.H., G.C. Allen, M. Zannelli and L.A. Beausang, 1998. Time-dependent effects of melatonin on immune measurements in male Syrian hamsters. J. Pineal Res., 25: 142-146.

Champney, T.H., J. Prado, T. Youngblod, K. Appel and D. N. McMurray, 1997. Immune responsiveness of splenocytes after chronic daily melatonin administration in male Syrian hamsters. Immunol. Lett., 58: 95-100.

Cohen, J.J. and R.C. Duke, 1984. Glucocorticoid activation of a calcium dependent endonuclease in thymocyte nuclei leads to cell death. J. Immunol., 132: 38-42.

Dohms, J.E. and A. Metz, 1991. Stress-mechanisms of immuno suppression. Vet. Immunol. Immuno. Pathol., 30: 89-109.

Fauci, A.S., 1975. Mechanisms of corticosteroid action on lymphocytes subpopulation. I. Redistribution of circulating T and B lymphocyte to the bone marrow. Immunology, 28: 669-678.

Garcia-Mauriño, S., M.G. Gonzalez-Haba, J.R. Calvo, M.R. El-Idrissi, V. Sanchez-Margalet, R. Goberna and J.M. Guerrero, 1997. Melatonin enhances IL-2, IL-6 and INF-( production by human circulating CD4  cells. J. Immunol, 159: 574-581. + rd

Gehad, A.E., H.S. Lillehoj, G.L. Hendricks 3  and M.M. Mashaly, 2002. Initiation of humoral immunity. II. The effects of T-independent and T-dependent antigens on the distribution of lymphocyte populations. Dev. Comp. Immuno., 26: 761-771.

Gordon, S.H. and S.A. Tucker, 1995. Effect of day length on broiler welfare. Br. Poult. Sci., 36: 844-845.

Haddad, E.E. and M.M. Mashaly, 1990. Effect of thyrotropin-releasing hormone, triiodothyronine and chicken growth hormone on plasma concentrations of thyroxine, triiodothyronine, growth hormone and growth of lymphoid organs and leukocyte populations in immature male chickens. Poult. Sci., 69: 1094-1102.

Ingram, D.R. and L.F. Hatten, 2000. Effects of light restriction on broiler performance and specific body weight structure Measurements. J. Appl. Poult. Res., 9: 501-504.  670 inflammatory cytokines: an integrated view. J. Anim. Sci., 75: 1244-1255.

Kassab, A., A.A. Al-Senied and M.H. Injidi, 1992. Effects of dietary ascorbic acid on the physiology and performance of heat-stressed broiler. Proceeding of the 2  symposium, Ascorbic acid in domestic nd animals, Ittingen, Switzerland, 270-285.

Kirby, J.D. and D.P. Froman, 1991. Research note: Evaluation of humoral and delayed hypersensitivity responses in cockerels reared under constant light or a twelve hour light: tweleve hour dark photoperiod. Poult. Sci., 70: 2375-2378.

Kliger, C.A., A.E. Gehad, R.M. Hulet, W.B. Roush, H.S. Lillehoj and M.M. Mashaly, 2000. Effect of photoperiod and melatonin on lymphocyte activities in male broiler chickens. Poult. Sci., 79: 18-25.

Kuby, J., 2000. Immunology. W.H.Freeman and Co., New York, N.Y., pp: 20-70, 100-225.

Kuhlwein, E. and M. Irwin, 2001. Melatonin modulation of lymphocyte proliferation and Th1/Th2 cytokine expression. J. Neuroimmunol, 117: 51-57.

Legradi, G., C.H. Emerson, R.S. Ahima, J.S. Flier and R. M. Lechan, 1997. Leptin prevents fasting-induced suppression of prothyrotropin-releasing hormone messenger ribonucleic acid in neurons of the hypothalamic paraventricular nucleus. Endocrinology, 138: 2569-2576.

Maestroni, G.J., 1998a. The photoperiod transducer melatonin and the immune-hematopoietic system. J. Photochem. Photobiol. B., 43: 186-192.

Maestroni, G.J., 1998b. kappa-Opioid receptors in marrow stroma mediate the hematopoietic effects of melatonin-induced opioid cytokines. Ann. N.Y. Acad. Sci., 840: 411-419.

Maestroni, G.J., A. Conti and W. Pierpaoli, 1987. Role of the pineal gland in immunity: II. Melatonin enhances the antibody response via an opiatergic mechanism. Clin. Exp. Immunol., 68: 384-391.

Mahmoud, I., S. Salman and A. Al-Kateeb, 1994. Continuous darkness and continuous light induce structural change in the rat thymus. J. Anat., 185:142-149.

McFarlane, J.M. and S.E. Curtis, 1989. Multiple concurrent stressors in chicks. 3. Effects on plasma corticosterone and the heterophil-lymphocyte ratio. Poult. Sci., 68: 522-527.

Moore, C.B. and T.D. Siopes, 2000. Effects of light conditions and melatonin supplementation on the cellular and humoral immune responses in Japanese quail Coturnix coturnix japonica. Gen. Comp. Endocrinol., 119: 95-104.

Mustonen, A.M., P. Nieminen, H. Hyvarinen and J. Asikainen, 2000. Exogenous melatonin elevates the plasma leptin and thyroxine concentrations of the mink (Mustela vison). Z. Naturforsch, [C] 55: 806813.

Poon, A.M., Z.M. Liu, F. Tang and S.F. Pang, 1994. Rozenboim, I.B. Robinzon and A. Rosenstraugh, 1999. Cortisol decreases 2 [125I] iodomelatonin binding Effect of light source and regimen on growing sites in the duck thymus. Eur. J. Endocrinol., 130: broiler. Br. Poult. Sci., 40: 452-457. 320-324. S.A.S. Institute, Inc., 1996. S.A.S. user’s guide: Statistics.

Raghavendra, V., V. Singh, S.K. Kulkarni and J.N. (version 6.12) S.A.S. Institute, Cary, N.C. Agrewala, 2001. Melatonin enhances Th2 cell Siegel, H.S., 1980. Physiological stress in birds. Biosci., mediated immune responses: lack of sensitivity to 30: 529. reversal by naltrexone or benzodiazepine receptor Trout, J.M., M.M. Mashaly and H.S. Siegel, 1996. antagonists. Mol. Cell Biochem., 221: 57-62. Changes in blood and spleen lymphocyte

Rahimi, G., M. Rezaei, H. Hafezian and H. Saiyahzadeh, populations following antigen challenge in 2005. The Effect of Intermittent Lighting Schedule on immature male chickens. Br. Poult. Sci., 37: 819 Broiler Performance. Int. J. Poult. Sci., 6: 396-398. 827.

Renden, J.A., R.J. Lien, S.S. Oates and S.F. Bilgili, 1994. Plasma concentrations of provided various lighting schedule. Poult. Sci., 73: 186-193.

MAKALAH MIKROBIOLOGI MIKROORGANISME DALAM MAKANAN

29 Jun

MAKALAH MIKROBIOLOGI

MIKROORGANISME DALAM MAKANAN

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Disusun Oleh :

Kelompok            :   I

Nama Anggota    :

  1. Fadhila Evandharu                (23010111120001)
  2. Galuh Estu P.                                    (23010111120012)
  3. Anggi Puspitasari                  (23010111120015)
  4. Samantha Dana Paramitha    (23010111120018)
  5. Jenny Febrianti                      (23010111120021)
  6. Salwa Khoerunnisa M           (23010111120025)
  7. Cahayu Nur Fitriani              (23010111120028)
  8. Adella Chinantya                  (23010111120034)
  9. Ghina Meriyana Dewi           (23010111120036)
  10. Hendra Samuel Siagian         (23010111120038)
  11. Budiati Dwi Intan P.             (23010111120047)
  12. Imam Azis Setiawan             (23010111120052)
  13.  Amos Tebay                         (H2B607001)

 

 

 

 

 

 

FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN

UNIVERSITAS DIPONEGORO

SEMARANG

2012

KATA PENGANTAR

 

Puji syukur dipanjatkan kehadiran Allah SWT, yang telah memberikan rahmat serta hidayahnya sehingga penulisan makalah tentang “Mikrobiologi Dalam Makanan” ini dapat terselesaikan sebagaimana mestinya. Penulisan makalah ini bertujuan untuk memenuhi salah satu tugas mata kuliah Mikrobiologi yang telah di berikan oleh dosen kepada kami.

Tidak dipungkiri bahwa makalah ini dapat terselesaikan berkat bantuan berbagai pihak, dan kami menyadari sepenuhnya tanpa adanya bantuan dan dukungan tersebut makalah ini mungkin tidak akan dapat diselesaikan tepat waktu. Terkait dengan semua itu pada kesempatan yang sangat berbahagia ini kami mengucapkan terimakasih dan penghargaan yang setinggi-tingginya kepada dosen yang telah mendidik kami.

 

Semarang, 10 April 2012

Penyusun

DAFTAR ISI

 

HALAMAN JUDUL…………………………………………………………………………………………….   i

KATA PENGANTAR…………………………………………………………………………………………..   ii

DAFTAR ISI……………………………………………………………………………………………………….    iii

BAB I PENDAHULUAN…………………………………………………………………………………….    1

BAB II PEMBAHASAN……………………………………………………………………………………..    2

  1. PengertianMikroorganisme……………………………………………………………………     2
  2. Klasifikasi Mikroorganisme dalam Bidang Pangan………………………………….      2
  3. Peran Positif Bakteri dalam Bidang Pangan……………………………………………      3
  4. Peran Negatif Bakteri dalam Bidang Pangan………………………………………….      5

BAB III PENUTUP…………………………………………………………………………………………….     9

  1. A.     Kesimpulan………………………………………………………………………………………..     9
  2. B.     Saran…………………………………………………………………………………………………      9

DAFTAR PUSTAKA…………………………………………………………………………………………..    10

 

 

BAB I

PENDAHULUAN

 

Dalam bidang pangan banyak mikroorganisme yang mempunyai peranan, baik peranan positif (memberikan keuntungan) atau peranan negatif (menimbulkan kerugian). Peranan mikroorganisme dalam bidang pangan diklasifikasikan menjadi beberapa bagian (Budiyanto, 2002).

Berbagai penyakit atau infeksi yang berbeda-beda mungkin terjadi karena memakan makanan yang terkontaminasi dengan organisme patogen.  Infeksi makanan terjadi karena memakan makanan yang mengandung organisme hidup yang mampu sembuh atau bersporulasi dalam usus yang menimbulkan penyakit (Volk, 1990).

Beberapa mikroorganisme menggunakan makanan yang sama dengan yang kita makan sehingga, untuk sebagian besar, pengawet makanan melibatkan pembinasaan mikroorganisme yang terdapat pada makanan atau pencegahannya agar tidak tumbuh (Volk, 1990).

Berbagai manfaat mikroorganisme dalam beberapa jenis makanan dan minuman misalnya fermentasi seperti tempe, kecap, tauco, sosis, keju, bier, anggur dan sebagainya telah sejak lama dikenal melengkapi menu makanan atau minuman sehari-hari. Makanan dan minuman tersebut diolah secara fermentasi dengan menggunakan kemampuan mikroba.

 

 

BAB II

PEMBAHASAN

 

 

  1. A.  Pengertian Mikroorganisme

Mikroorganisme merupakan jasad hidup yang mempunyai ukuran sangat kecil (Kusnadi dalam Ali, 2008). Setiap sel tunggal mikroorganisme memiliki kemampuan untuk melangsungkan aktivitas kehidupan antara lain dapat dapat mengalami pertumbuhan, menghasilkan energi dan bereproduksi dengan sendirinya.

Mikroorganisme memiliki fleksibilitas metabolisme yang tinggi karena mikroorganisme ini harus mempunyai kemampuan menyesuaikan diri yang besar sehingga apabila ada interaksi yang tinggi dengan lingkungan menyebabkan terjadinya konversi zat yang tinggi pula. Akan tetapi karena ukurannya yang kecil, maka tidak ada tempat untuk menyimpan enzim-enzim yang telah dihasilkan. Dengan demikian enzim yang tidak diperlukan tidak akan disimpan dalam bentuk persediaan.enzim-enzim tertentu yang diperlukan untuk perngolahan bahan makanan akan diproduksi bila bahan makanan tersebut sudah ada. Mikroorganisme ini juga tidak memerlukan tembat yang besar, mudah ditumbuhkan dalam media buatan, dan tingkat pembiakannya relative cepat (Darkuni dalam Ali, 2008). Oleh karena aktivitasnya tersebut, maka setiap mikroorganisme memiliki peranan dalam kehidupan, baik yang merugikan maupun yang menguntungkan.

Sekilas, makna praktis dari mikroorganisme disadari tertutama karena kerugian yang ditimbulkannya pada manusia, hewan, dan tumbuh-tumbuhan. Misalnya dalam bidang mikrobiologi kedokteran dan fitopatologi banyak ditemukan mikroorganisme yang pathogen yang menyebabkan penyakit dengan sifat-sifat kehidupannya yang khas. Walaupun di bidang lain mikroorganisme tampil merugikan, tetapi perannya yang menguntungkan jauh lebih menonjol (Ali, 2008)

 

  1. B.  Klasifikasi Mikroorganisme dalam Bidang Pangan

Klasifikasi mikroorganisme dalam bidang pangan yang sering digunakan adalah sebagai berikut:

  1. Bakteri basil dan koki gram negatif
  2. Bakteri basil gram negatif, anaerobik fakultatif
  3. Bakteri basil gram negatif anaerobik
  4. Bakteri basil dan kokobasil gram negatif
  5. Bakteri gram positif
  6. Bakteri basil gram positif, tidak berspora
  7. Bakteri pembentuk spora
  8. Bakteri dengan sel bercabang/bertunas (Budiyanto, 2002).

 

  1. C.  Peran Positif Bakteri dalam Bidang Pangan

Menurut Schlegel (1994) beberapa bukti mengenai peranan mikrobiologi dapat dikemukakan sebagai proses klasik menggunakan bakteri.  Di Jepang dan Indonesia sudah sejak zaman dahulu kacang kedelai diolah dengan menggunakan bantuan fungi, ragi, dan bakteri asam laktat. Bahkan sudah sejak zaman perang dunia pertama fermentasi terarah dengan ragi digunakan untuk membuat gliserin. Asam laktat dan asam sitrat dalam jumlah besar yang diperlukan oleh industri makanan, masing-masing dibuat dengan pertolongan bakteri asam laktat dan cendawan Aspergillus niger.

  1. Pengawetan makanan dengan mikroorganisme
    1. Sayuran yang terfermentasi

Hampir semua sayuran dapat mengalami fermentasi bertipe asam laktat, yang biasanya dilakukan oleh berbagai jenis Sterpcococcus, Lactobacillus leuconostoc, dan Pediococcus.  Organisme-organisme ini mengubah gula yang terdapat dalam sayuran terutama menjadi asam laktat yang mengatasi pertumbuhan organisme lain dan menberi rasa unik pada sayuran yang terfermentasi.  Setelah fermentasi, sayuran semacam itu sering disebut “teracarkan” dan tidak jarang terlihat botol-botol acar bit, acar kacang hijau, atau acar wortel.

  1. Saurkraut (kubis asin)

Saurkraut ialah produk fermentasi asam laktat kubis yang diparut.  Kubis segar selalu mengandung sejumlah jenis Leuconostoc dan Lactobacillus, sehingga tidak perlu ditambahkan bakteri untuk memulai fermentasi.

  1. Acar

Organisme yang bertanggungjawab terhadap acar terfermentasi pada dasarnya adalah semua jenis marga Lactobacillus dan produk akhirnya mempunyai sekitar keasaman yang sama dengan saurkraut.

  1. Zaitun

Zaitun hijau semula diperlakukan dengan 1 sampai 2 persen larutan alkalis selama 24 jam untuk menghilangkan sebagian dari rasa pahit.  Setelah dicuci dengan sempurna untuk mehilangkan air alkalis, zaitun diletakkan dalam tong dan direndam dengan larutan garam 6 sampai 9 persen.  Fermentasi asam laktat yang kemudian berlanjut berlangsung selama 6 hingga 10 bulan, yang setelah itu zaitun hijau dipilah dan dikemas.

  1. Daging terfermentasi

Sosis adalah satu-satunya produk daging terfermentasi.  Sosis yang telah diolah kemudian disimpan pada suhu 8oC selama 40 hari atau lebih, yang selama waktu itu terjadi fermentasi asam laktat disertai dehidrasi daging yang cukup.  Tentu saja hal ini meningkatkan kadar garam yang bersama dengan asam laktat mencegah pertumbuhan organisme yang merusak.

  1. Makanan terfermentasi dari timur

Kecap dibuat dari kedelai yang dimasak kemudian difermentasi.  Enzim disekresikan oleh jamur Aspergillus yang menghidrolisiskarbohidrat dan protein kedelai dan tak diragukan lagi menyebabkan cita rasa kecap yang khas.  Lactobacillus delbrueckii memfermentasi karbohidrat, yang membentuk cukup asam kojat untuk mencegah perusakan.  Bakteri asam laktat yang lain maupun beberapa marga khamir memberikan sumbangan kepada citarasa akhir kecap.

 

  1. Protein sel tunggal

Single cell protein (SCP) mengacu pada mikroorganisme yang digunakan sebagai makanan baik untuk manusia maupun hewan.  Protein ini terdiri atas khamir, ganggang atau bakteri, walaupun kebanyakan prosesor SCP pada akhir-akhir ini menggunakan khamir.  Produksi SCP memberikan metode pengubahan sumber karbohidrat yang murah menjadi makanan yang dapat dimakan yang mengandung sampai sebanyak 70 persen protein dan bobot kering maupun kebanyakan vitamin B (Volk, 1990).

Proses menggunakan mikroba fermentasi klasik telah diganti dengan cara baru untuk produksi dan konversi menggunakan mikroba. Senyawa karotenoid dan steroid diperoleh dari fungi. Sejak ditemukan bahwa Corynebacterium glutamicum memproduksi glutamat dengan rendemen tinggi dari gula dan garam amonium, maka telah diisolasi berbagai mutan dan dikembangkan proses baru yang memungkinkan pembuatan banyak jenis asam amino, nukleotida, dan senyawabiokimia lain dalam jumlah besar. Bakteri juga diikutsertakan oleh para ahli kimia pada katalisis sebagian proses dalam rangkaian sintesis yang panjang; biokonversi oleh mikroba lebih spesifik dengan rendemen lebih tinggi, mengungguli koversi secara kimia; amilase untuk hidrolisis pati, proteinase pada pengolahan kulit, pektinase untuk penjernihan sari buah dan enzim-enzim lain yang digunakan di industri diperoleh dari biakan bakteri (Ali, 2008).

Bakteri yang menguntungkan kita, misalnya Enterobacter aerogenes, Erwinia herbicola, Leuconostoc plantarum sangat berperan dalam pembuatan sauerkraut (kubis fermentasi). Streptococcus thermophylus dan Lactobacillus bulgaricus berperan dalam pembuatan yogurt, Pedicoccus cerevisiae dan Micrococcus sp. berperan dalam penbuatan sosis. Acetobacter xylinum berperan dalam pembuatan nata de coco (Budiyanto, 2002).

 

  1. D.  Peran Negatif Bakteri dalam Bidang Pangan

Berbagai penyakit atau infeksi yang berbeda-beda mungkin terjadi karena memakan makanan yang terkontaminasi dengan organisme patogen.  Infeksi makanan terjadi karena memakan makanan yang mengandung organisme hidup yang mampu sembuh atau bersporulasi dalam usus yang menimbulkan penyakit.

Penyakit yang paling mendapat perhatian adalah penyakit-penyakit makanan yang disebabkan oleh organisme yang biasanya dianggap ada.  Penyakit-penyakit ini dapat dibagi menjadi dua kelompok besar.

  1. Infeksi Makanan

Infeksi makanan terjadi karena memakan makanan yang mengandung organisme hidup yang mampu sembuh atau bersporulasi di dalam usus yang menimbulkan penyakit.  Organisme penting yang menimbulkan infeksi makanan meliputi C. Perfringens, Vibrio parahaemolyticus, dan sejumlah jenis Salmonela yang berlainan.

  1. Salmonella

Reservoir utama bagi Salmonella ialah saluran pencernaan banyak hewan, meliputi burung, hewan ternak, reptilia, dan manusia.  Orang menjadi terinfeksi karena kemasukan makanan atau minuman yang terkontaminasi.  Sudah barang tentu air menjadi tercemar karena masuknya kotoran dari hewan apa saja yang mengekskresi Salmonella.  Infeksi melalui makanan terjadi karena masuknya daging yang terkontaminasi atau melewati tangan sebagai perantara dalam pemindahan Salmonella dari sumber yang terinfeksi.

  1. Clostridium perfringens

Organisme ini memproduksi berbagai ragam eksotoksin.  Membentuk spora apabila berada di dalam usus, dan hanya pada waktu pembentukan endospora dalam usus itulah toksin peracunan makanan diproduksi.  Sumber yang paling sering ialah daging atau produk-produk daging.  Masuknya masakan daging semacam itu mengakibatkan rasa sakit perut dan diare yang akut sesudah masa inkubasi 8 sampai 24 jam.

  1. Vibrio parahaemolyticus

Kerang-kerangan merupakan sumber infeksi saluran pencernaan jika dimasak mentah atau sedikit dimasak.  Belum diketahui dengan tepat bagaimana diare yang dihubungkan dengan organisme ini dapat terjadi, tetapi kegawatan infeksi ini dapat dirasakan dengan memikirkan kenyataan bahwa laju kematian karena infeksi V. Parahaemolytikus dapat mendekati 7 atau 8 persen.

  1. Langkah pengendalian

Jadi, makanan sekali-kali jangan dibiarkan berada pada suhu kamar yang akanme mungkinkan mikroorganisme yang mengontaminasi berkembangbiak.

  1. Peracunan Makanan

Peracunan makanan tidak disebabkan oleh menelan organisme hidup melainkan dengan kemasukan toksin atau substansi beracun yang beracun yang disekresikan ke dalam makanan. Dalam hali yang terakhir, organisme ini mungkin mati setelah pembentukan toksin dalam makanan, tetapi apabila toksin itu sendiri dimusnahkan, peracunan makanan yang hebat dapat terjadi dari memakanan makanan itu. Organisme yang menyebabkan peracunan makanan mencakup S. aureus, C. botulium, dan B. cereus.

  1. a.    Staphylococcus

Peracunan ini disebabkan oleh kokus gram positif kecil, stafilokokus yang sama bertanggung jawab atas banyak masalah infeksi di rumah sakit.  Organisme itu mudah tumbuh pada media hara biasa dan walaupun banyak galur memerlukan beberapa asam amino dan satu vitamin B atau lebih, galur-galur ini tidak dapat dipandang sebagai bakteri yang sukar dipelihara.  Ciri peracunan makanan stafilokokus yang sangat menonjol adalah diare yang hebat, muntah-muntah dan sakit perut, sedangkan bantuan yang menonjol adalah masa inkubasinya yang pendek sekitar 2 sampai 4 jam.

  1. Bacillus cereus

Organisme ini adalah batang besar gram positif yang membentuk spora dan merupakan salah satu anggota suku Bacillaceae saprofit yang paling sering terdapat dimana-mana.  Apabila makanan yang di dalamnya terdapat organisme ini, selama 24 jam terjadi rasa sakit perut yang hebat dan diare beberapa jam setelah termakan.  Ditemukan di dalam tanah dan pada makanan mentah dan kering, mencakup beras yang belum dimasak.

  1. Clostridium botulinum

C. botulinum, batang gram positif yang besar dalam suku Bacillaceae, adalah jasad etiologi peracunan makanan yang sangat fatal dan biasanya terjadi setelah menelan eksotoksin yang terbentuk sebelumnya yang dihasilkan oleh organisme ini sewaktu tumbuh dalam makanan.

  1. Epidemiologi botulisme

Tersebar dalam tanah, pada dasar danau dan pada vegetasi yang membusuk, begitu banyak makanan, sayuran dan daging, terkontaminasi dengan organisme ini.  Banyak hewan mati setiap tahun setelah menelan butiran-butiran yang terfermentasi.

 

  1. Patogenis botulisme

Gejala pada manusia biasanya mulai setelah masa inkubasi 18 sampai 36 jam dan mencakup mual dan muntah-muntah di samping penglihatan ganda, kesulitan menelan dan beberapa kelumpuhan otot.

  1. Diagnosis botulisme

Setelah orang memperlihatkan gejala botulisme, mungkin dalam darahnya masih beredar toksin bebas.  Mencit sangat peka terhadap toksin ini.

  1. Pencegahan dan pengendalian botulisme

Tidak seperti endospora organisme ini, toksin botulisme sangat labil terhadap suhu.  Jadi sayuran kalengan rumahan harus dimasak selama 15 menit sebelum dihidangkan.  Perlakuan semacam itu akan menginaktivasi toksin yang mungkin ada.

 

Peracunan makanan disebabkan oleh elaborasi eksotoksin oleh bakteri selama pertumbuhannya dalam makanan yang terkontaminasi.  Tipe paracunan makanan yang agak berbeda, kadang-kadang disebut infeksi makanan, disebabkan oleh efek racun sel bakteri yang ditelan (Volk, 1990).

Banyak bakteri saprofitik yang hidup pada bahan makanan dan dapat merusak serta meracuni bahan makanan tersebut. Akibat aktivitas tersebut, tidak sedikit kerugian yang ditimbulkannya. Berikut ini beberapa contoh bakteri perusak bahan makanan, yaitu: Pseudomonas cocovenenans penghasil asam bongkrek pada tempe bongkrek. Clostridium botulinum penghasil toksin pada makanan dan minuman kaleng. Erwinia, Bacillus dan Clostridium bersifat pektolitik yang menyebabkan busuk air atau busuk lunak (soft rot) pada sayuran dan buah- buahan dan juga dapat menyebabkan hilangnya kemampuan membentuk gel pada sari buah. Alcaligens viscolactis dan Enterobacter aerogenes menyebabkan pelendiran pada susu. Lactobacillus plantarum menyebabkan pelendiran pada produk buah- buahan, sayuran, cider, sauerkraut, dan bir (Budiyanto, 2002).

 

 

BAB III

PENUTUP

  1. A.    Simpulan
  2. Mikroorganisme merupakan jasad hidup yang mempunyai ukuran sangat kecil.
  3. Klasifikasi mikroorganisme dalam bidang pangan yaitu : Bakteri basil dan koki gram negatif, Bakteri basil gram negatif, anaerobik fakultatif, Bakteri basil gram negatif anaerobik, Bakteri basil dan kokobasil gram negatif, Bakteri gram positif, Bakteri basil gram positif tidak berspora, Bakteri pembentuk spora, dan Bakteri dengan sel bercabang/bertunas (Budiyanto, 2002).
  4. Mikroorganisme memiliki banyak peranan dalam kehidupan, baik peranan yang menguntungkan maupun peranan yang merugikan.
  5. Peranan mikroorganisme yang menguntungkan adalah pengawetan makanan dengan mikroorganisme, contohnya bakteri yang menguntungkan kita adalah Enterobacter aerogenes, Erwinia herbicola, Leuconostoc plantarum sangat berperan dalam pembuatan sauerkraut (kubis fermentasi).
  6. Peranan mikroorganisme yang merugikan adalah dengan menimbulkan penyakit dan infeksi makanan. Organisme penting yang menimbulkan infeksi makanan meliputi C. Perfringens, Vibrio parahaemolyticus, dan sejumlah jenis Salmonela yang berlainan. Dan Organisme yang menyebabkan peracunan makanan mencakup S. aureus, C. botulium, dan B. cereus.

 

  1. B.     Saran

Adapun saran yang dapat kami berikan antara lain:

  1. Perlu perhatian yang lebih lagi dalam menjaga kebersihan makanan yang kita makan, mengingat begitu sentral dan akibat apabila makanan tersebut terdapat banyak mikroba yang dapat menyebabkan efek infeksi dan keracunan makanan dalam tubuh kita. makanan sekali-kali jangan dibiarkan berada pada suhu kamar yang akanme mungkinkan mikroorganisme yang mengontaminasi berkembangbiak.
  2. Perlunya penelitian-penelitian lebih lanjut tentang kehidupan mikroorganisme yang bermanfaat dalam bidang menfermentasikan makanan.

DAFTAR PUSTAKA

 

Budiyanto, Moch Agus Kresno. 2002. Mikrobiologi Terapan. Malang. Penerbit : Universitas Muhammadiyah Malang.

Volk, Wesley A dan Wheeler, Margaret F. 1990.  Basic Microbilogy fifth edition. Jakarta. Penrbit Erlangga. (diterjemahkan oleh Soenartono Adisoemarto. 1990. Mikrobiologi Dasar edisi kelima jilid 2).

http://iqbalali.com/2008/02/18/peran-mikroorganisme-dlm-kehidupan/ (diakses pada tanggal 7 April 2012)

 

 

MAKALAH KWU

29 Jun

MAKALAH

KWU

 

 

 

 

 

Oleh :

 

            Galuh Estu Prihatminingsih            (23010111120012)

            Halimah Nuria Rakhim                    (23010111120022)

            Ika Dian Lestari                                (23010111120019)

            Ilmianisa Azizah                                (23010111120004)

Arif Nurrohman                               (23010111200050)

 

 

 

 

 

 

 

 

                                        

 

FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN

UNIVERSITAS DIPONEGORO

SEMARANG

20012

LANDS CAFE

Lans Cafe adalah sebutan untuk warung yang ia kelola. Ia membuka cafe itu mulai pukul 9 pagi sampai 7 malam. Cafe yang terletak di daerah Gaharu Utara ini memiliki area yang strategis karena berdekatan dengan sekolahan. Lans cafe memiliki banyak pengunjung, dari yang anak-anak hingga yang dewasa pun ikut “nongkrong” untuk sekedar ngobrol-ngobrol bersama. Jualan yang ia promosikan bervariasi dari minuman 500an, jus, ice cream, mie, omelette, nasi goreng, spagetti yang harganya terjangkau untuk semua kalangan.

Tante Rani sang pemilik cafe adalah seorang wirausaha terbilang masih muda. Ia bukan asli dari Semarang, melainkan dari Surabaya. Dengan bermodal nekat, ia merantau dan bekerja untuk menghidupi 3 anaknya.

Awal tahun 2007 ia merantau ke Semarang dan mulai mencari-cari pekerjaan, namun kesempatan belum ada ditangannya. Setelah beberapa bulan kemudian ia berani untuk memasarkan Brownies yang ia buat sendiri ke pasaran. Keberuntungan pun akhirnya berpihak kepada Tante Rani. Setelah sukses berjualan brownies ia mulai mengontrak rumah dari hasil kerja kerasnya selama ini. Namun, bisnis brownies pun tak berlangsung lama.

Keseriusan, ketekunan, dan semangat pantang menyerah dalam memulai berwirausaha sangat di tonjolkan dari sosok Tante muda ini. Bisnis brownies yang gagal pun tak jadi masalah baginya, Menurut Tante Rani “Segala sesuatu itu pasti ada hikmahnya, mungkin belum rezeki saya bergelut dibidang kue, namun saya akan tetap berjuang meskipun harus di mulai dari awal”.

Sebelum menetap sebagai pemilik Lans Cafe, tante Rani juga pernah membuka warung kelontong yang menjual berbagai keperluan rumah tangga, dan jajanan anak-anak. Anak-anak yang mengunjungi warungnya biasanya membeli minuman seharga 500 rupiah, yang disesuaikan dengan kemampuan uang saku anak sekolah. Modal awal 150 ribu rupiah, ia mulai memfokuskan bisnisnya ke bidang makanan dan minuman yang sekarang telah menjadi Lans Cafe ini.

Tante Rani tidak pernah mempromosikan cafenya melalui brosur, maupun tekhnologi informasi, proses tersebut terjadi secara alamiah melalui “gatok tular” di antara anak sekolah. Kreativitas dan inovasi untuk mengolah menu dan cara penyajian yang menarik, membuat pelanggannya betah dan ingin kembali “jajan” di Lans Cafe.

Pendapatan bersih yang di peroleh per hari menurut pengakuannya berkisar mencapai 500 ribu – 1 juta rupiah. Hal ini memotivasi pengembangan yang mulai dirintis di tempat lain, di Karangrejo, namun sayangnya usaha pengembangan ini tidak berhasil dan akhirnya di tutup dan hanya memfokuskan di Gaharu Utara saja.

Menurut Tante Rani “Kiat untuk berwirausaha agar sukses adalah kita harus banyak bersabar dan tidak mudah putus asa”.

Akhirnya sampai sekarang Lans Cafe pun berjalan dengan sukses dan berkembang dengan baik.

 

 

LAMPIRAN (GAMBAR)

 


 

 

MAKALAH PENGARUH PUPUK KANDANG TERHADAP PERTUMBUHAN RUMPUT GAJAH (Pennisetum purpureum)

29 Jun

MAKALAH

PENGARUH PUPUK KANDANG TERHADAP PERTUMBUHAN RUMPUT GAJAH (Pennisetum purpureum)

Oleh:

ARIF NURROHMAN 23010111120050

 

 

JURUSAN S-1 PETERNAKAN

FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN

UNIVERSITAS DOPONEGORO

SEMARANG

2012

KATA PENGANTAR

            Puji syukur kehadirat Allah SWT yang telah berkenan melimpahkan rahmatnya, sehingga penulis dapat menyelesaikan makalah Ilmu Tanaman Pakan dengan judul Pengaruh Pupuk Kandang Terhadap Pertumbuhan Rumput Gajah (Pennisetum purpureum) sebagaimana mestinya.

Penulis menyampaikan terima kasih kepada Ibu Eny Fuskhah selaku dosen pengampu mata kuliah Ilmu Tanaman Pakan dan rekan-rekan yang banyak membantu berpartisipasi dalam memberikan pendapat, sampai penyusunan makalah Ilmu Tanaman Pakan ini selesai.

Penulis menyadari bahwa dalam penulisan makalah ini belumlah sempurna, namun penulis mengharapkan saran dan kritik yang bersifat membangun sehingga dalam penyusunan makalah ini dapat lebih baik. Semoga isi dari makalah Ilmu Tanaman Pakan ini bermanfaat.

Semarang,       Juni 2012

Penulis

 

 

 

 

BAB I

PENDAHULUAN

Penggunaan tanah marginal untuk kepentingan pertanian seperti pada sebagian besar Inceptisols dihadapkan pada beberapa masalah serius antara lain: derajat kemasaman yang tinggi, kadar bahan organik yang rendah, kekurangan unsur hara penting bagi tanaman, seperti N, P, Ca, Mg, dan Mo, serta tingginya kelarutan Al, Fe, dan Mn. Budidaya tanaman memerlukan eneri, dan semakin banyak tanaman yang dibudidayakan maka semakin banyak pula asupan energi yaitu pupuk yang digunakan. Apabila selelau diberikan pupuk buatan atau pupuk kimia maka hanya akan mempercepat produksi tanaman, akan tetapi kontruksi tanah akan rusak karena tanah menjadi kering dan tandus. Maka perlu adanya pupuk yang tidak hanya memberi asupan energi pada tanaman, tetapi juga dapat memperbaiki struktur tanah. Menggunakan pupuk kandang merupakan salah satu cara untuk memperbaiki tanah dan produksi tanaman.

Tujuan dari pembuatan makalah ini yaitu untuk mengetahui pertumbuhan tanaman rumput gajah dari pemberian pupuk kandang. Manfaat pembuatan makalah ini yaitu untuk mengetahui pengaruh pemberian pupuk kandang terhadap pertumbuhan tanaman rumput gajah (Pennisetum purpureum).

 

 

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1.      Tanah

Tanah berasal dari bahasa Yunani: pedon; bahasa Latin: solum. Tanah adalah bagian kerak bumi yang tersusun dari mineral dan bahan organik. Tanah sangat berperan bagi semua kehidupan di bumi karena mendukung kehidupan tumbuhan dengan menyediakan hara dan air sekaligus sebagai penopang akar. Struktur tanah yang berongga-rongga juga menjadi tempat yang baik bagi akar untuk bernapas dan tumbuh. Tanah menjadi habitat hidup berbagai mikroorganisme. Sebagian besar hewan darat, tanah menjadi lahan untuk hidup dan bergerak (Wikipedia, 2012). Dari segi klimatologi, tanah memegang peranan penting sebagai penyimpan air dan menekan erosi, meskipun tanah sendiri juga dapat tererosi. Komposisi tanah berbeda-beda pada satu lokasi dengan lokasi yang lain. Air dan udara merupakan bagian dari tanah (Tan, 1995).

 

2.2.      Pupuk Organik

Pupuk adalah semua bahan yang diberikan kedalam tanah baik yang organik maupun yang anorganik dengan maksud untuk mengganti kehilangan unsur tanah dari dalam tanah dan bertujuan untuk meningkatkan produksi tanaman dalam keadaan factor keliling atau keadaan yang baik (Sutejo dan Kartasapoetra, 1987). Pupuk organik ialah zat organik yang digunakan sebagai pupuk organik dalam pertanian. Pupuk kandang berperan dalam kesuburan tanah dengan menambahkan zat dan nutrien, seperti nitrogen yang ditangkap bakteri dalam tanah. Organisme yang lebih tinggi kemudian hidup dari jamur dan bakteri dalam rantai kehidupan yang membantu jaring makanan tanah (Wikipedia, 2012).

Pupuk kandang merupakan salah satu contoh pupuk organik yang berasal dari kandang ternak, baik berupa kotoran padat (faeces) yang bercampur sisa makanan maupun air kencing (urine), sehingga kualitas pupuk kandang beragam tergantung pada jenis, umur serta kesehatan ternak, jenis dan kadar sertakandungan haranya (Sangatanan dan Sangatanan, 1989). Pupuk organik yang dikembalikan melalui pupuk kandang selain sebagai sumber bahan organik tanah juga sebagai sumber hara bagi pertumbuhan tanaman (Ende dan Taylor, 1969). Bahan organik memegang peranan penting pada tanah tropis, karena hampir semua unsur terdapat didalamnya (Agboola, 1974) Pupuk kandang biasanya terdiri atas campuran 0,5% N; 0,25 P2O5 dan 0,5 K2O (Allison, 1973). Pupuk kandang sapi padat dengan kadar air 85% megandung 0,4% N; 0,2% P2O5 dan 0,5% K2O dan yang cair dengan kadar  95% mengandung 1% N; 0,2% P2O5 dan 0,1% K2O. proses perombakan bahan organik pada tahap awal bersifat hidrolisis karena proses ini berlangsung dengan adanya air dan enzim hidrolisa ekstra selluler yang menghasilkan senyawa yang lebih sederhana dan mudah larut dalam air sehingga mikrooragnisme dapat memanfaatkannya terutama dalam kondisi aerobik. Perombakan selanjutnya dalam kondisi aerobik dengan hasil akhir CO2 dan H2O. Dalam kondisi anaerobik hasil samping adalah asam asetat, asam pripionat, asam laktat, asam butirat dan asam format serta alcohol dan gas CO2, H2O dan methan (CH4) (Sugito, et al, 1995).

 

2.3.      Rumput Gajah (Pennisetum purpureum)

            Rumput gajah adalah tanaman tahunan, tumbuh tegak, mempunyai perakaran dalam dan berkembang dengan rizhoma untuk membentuk rumpun. Karangan bunga mempunyai panjang 8-30 cm dan lebar 1,5-3cm dengan warna kuning, coklat kekuningan atau ungu. Panjang batang rumput mencapai 2-7 m dengan buku dan kelopak berbulu. Helai daun mempunyai panjang 30-90 cm dan lebar 2,5mm sedangkan lidah daun sangat sempit dan berbulu putih pada ujungnya dengan panjang 3 mm (Soegiri et al, 1982). Rumput gajah berasal dari Nigeria dan tersebar luas diseluruh Afrika Tropik. Rumput gajah biasa dikembangbiakkan dengan stek batang atau pols dan mampu tumbuh baik pada tanah ringan sampai berat. Rumput gajah dapat tumbuh pada ketinggian 0-3000 m diatas permukaan laut dengan curah hujan tahunan sebesar sebesar 1000mm atau lebih (Reksohadiprojo, 1985).

Pemotongan rumput gajah disisakan 10-15 cm, pemotongan pada musm penghujan dilakukan setiap 30-50 hari sedangkan pada musim kemarau setiap 50-60 hari (Reksohadiprojo, 1985). Rumput gajah cukup baik untuk silase, berproduksi tinggi, disukai ternak, dan dapat digunakan untuk perbaikan kesuburan tanah. Selain itu, cukup aditif terhadap keasaman tanah, tahan terhadap genangan air. Rumput gajah didaerah tropis lembab Afrika dengan irigasi yang baik mampu berproduksi 290 ton rumput segar/ha/tahun (Soegiri et al, 1982).

BAB III

METODOLOGI

  1. A.                Teknik Pengumpulan Data

Teknik pengumpulan data yang digunakan adalah dengan metode literatur. Metode ini dilakukan dengan mencari informasi yang relevan dari buku dan internet.

  1. B.                 Sumber Data

Sumber data yang didapatkan berasal dari hasil penelusuran dan pengumpulan informasi dari berbagai buku dan sumber internet yang relevan seperti buku tentang tanah dan buku pertanian terutama tentang tanaman rumput gajah serta sumber informasi seputar tanamn rumput gajah dan kesuburan tanah dari internet.

  1. C.                Teknik Analisis Data

Data berbagai sumber dianalisis secara deskriptif kualitatif. Pembahasan dilakukan dengan metode triangulasi. Data dari sebuah sumber diceksilangkan dengan data dari sumber lain untuk mendapatkan kesimpulan. Selanjutnya arah pembahasan ditujukan untuk menjawab permasalahan seperti yang ditulis di muka.

 

 

BAB IV

PEMBAHASAN

Peningkatan kandugan bahan organik tanah pada tanah sangat bermanfaat, disamping menyediakan unsur nitrogen juga menyediakan unsur-unsur lainnya.  Bahan organik dalam tanah juga bermanfaat untuk menetralisir akibat buruh dari pengaruh kemasaman, yaitu menekan keracunan aluminium, meningkatnya ketersediaan unsur hara utamanya fosfat, dan juga memperbaiki struktur tanah yang baik untuk pertumbuhan perakaran. Indikator respon peningkatan bahan organik tanah pada tanah masam tertinggi adalah terhadap produksi bahan kering hijauan diikuti serapan nitrogen dan tinggi tanaman. Kandungan protein kasar hijauan dan kandungan khlorofil juga menunjukkan indikasi nilai rata-rata tertinggi dibanding perlakuan lainnya. Hasil penelitian sebelumnya (Sumarsono, 2005) menunjukkan bahwa tingkat peningkatan produksi hijauan terlihat sangat tinggi akibat peningkatan kandungan bahan organik tanah, yaitu mencapai 212,98 % setiap penambahan 1 % C organik tanah. Kebutuhan dan efisiensi pemupukan ditentukan oleh faktor yang saling berkaitan antara ketersediaan hara dalam tanah dengan kebutuha hara tanama. Pemupukan yang kurang dari keperluan tanaman akan menjadikan tidak optimalnya produksi. Kelebihan pemupukan juga berarti pemborosan, yang dapat menyebabkan tanaman rentan terhadap serangan hama penyakit, dan dalam jangka lama dapat menyebabkan terjadinya pencemaran lingkungan, seperti populasi nitrat dalam air minum yang tercemar. Pupuk kandang  dan sumber organik lainnya digunakan untuk meningkatkan kesuburan tanah, meningkatkan kadar bahan organik tanah, menyediakan hara mikro, dan memperbaiki struktur tanah. Penggunaan bahan-bahan ini juga dapat meningkatkan pertumbuhan mikroba dan perputaran hara dalam tanah.

Pemberian bahan organik pupuk kandang selain menyumbangkan unsur hara yang dikandungnya, tetapi juga dapat meningkatkan ketersediaan unsur hara lain dalam tanah. Pemberian pupuk kandang dapat menghemat pupuk N, tetapi juga dapat mengurangi penggunaan pupuk P dan K serta menigkatkan hasil produksi tanaman rumput gajah. Menurut Havlin et al. (1999) yang menyatakan bahwa pemberian bahan organik pada tanah dapat meningkatkan ketersediaan P untuk tanaman, karena bahan organik didalam tanah berperan dalam hal (1) pembentukan kompleks organofosfat yang mudah diassimilasi oleh tanaman, (2) penggantian anion H2PO4- pada tapak jerapan, (3) penyelimutan oksida Fe/Al oleh humus yang membentuk lapisan pelindung dan mengurangi penjerapan P, (4) meningkatkan jumlah P organik yang dimineralisasi menjadi P anrganik. Pengaruh pemberian pupuk kandang terhadap pertumbuhan rumput gajah sangat memperngaruhi produktifitas rumput gajah tersebut. Hal ini disebabkan karena penggunaan pupuk kandang bagi tanah secaara kimia memberikan keuntungan menambha unsur hara terutama NPK dan meningkatkan KPK serta secara biologi dapat meningkatkan aktifitas mikroorganisme tanah (Allison, 1973). Susetyo (1985) menambahkan, NPK mangandung beberapa unsur, antara lain unsur nitrogen (N) yang berfungsi dalam sintesis protein, sedangkan protein berfungsi sebagai pembangun protoplasma untuk membentuk organ-organ tanaman. Unsur fosfor (P) berfungsi  untuk pertumbuhan akar maupun pada bagian atas tanaman seperti batang dan daun. Manfaat lain fosfor yaitu untuk memacu pertumbuhan akar, merangsang pertumbuhan jaringan tanaman yang membentuk titik tumbuh tanaman, memacu pertumbuhan bunga dan pemasakan buah, memperbesar prosentase terbentuknya bunga menjadi buah dan biji dan menambah daya tahan terhadap hama penyakit (Englsand, 1985). Unsur kalium (K) berguna untuk menambah sintesa dan translokasi karbohidrat, sehingga mempercepat ketebalan dinding sel dan kekuatan tangkai (Englsad, 1985). Apabila terjadi defisiensi kalium maka akan tampak daun yang hangus pada sebagian tanaman (Susetyo, 1985)

Pemberian pupuk kandang dapat memperbaiki kondisi lingkungan pertumbuhan tanaman yang pada akhirnya mampu meningkatkan hasil produksi suatu tanaman. Bahan organik dapat memperbaiki sifat fisik dan kimia tanah juga dapat meningkatkan jumlah dan aktifitas mikroorganisme tanah (Hsieh dah Hsieh, 1990). Perombakan bahan organik akan menyumbangkan unsur hara yang dikandungnya untuk tanaman. Hasil penelitian Noo dan Ningsih (1998) menunjukkan pupuk kandang kotoran sapi mempunyai kadar N 0,92%, P 0,23%, K 1,03%, Ca 0,38%, Mg 0,38%, yang akan dapat dimanfaatkan oleh tanaman kalau sudah terurai. Peningkatan hasil produksi tanaman dengan pemberian pupuk kandang bukan saja karena pupuk kandang merupakan sumber hara N dan juga unsur har lainnya untuk pertumbuhan tanaman, selain itu pupuk kandang juga berfungsi dalam meningkatkan daya pegang tanah terhadap pupuk yang diberikan dan meningkatkan kapasitas tukar kation (KTK) tanah (Karama, 1990). Pemberian bahan organik pupuk kandang selain meningkatkan kapasitas tukar kation juga dapat meningkatkan kemampuan tanah menahan air, sehingga unsur hara yang ada dalam tanah maupun yang ditambahkan dari luar tidak mudah larut dan hilang, unsur hara tersebut tersedia bagi tanaman. Pada tanah yang kandungan pasirnya lebih dari 30% dan kandungan bahan organiknya tergolong rendah dan sasngat memerlukan pemberian bahan organik untuk meningkatkan produksi dan mengefisiensikan pemupukan.

 

 

BAB V

KESIMPULAN

            Kebutuhan dan efisinesi pemupukan ditentukan oleh faktor yang saling berkaitan antara ketersediaan hara dalam tanah dengan kebutuhan hara tanaman. Pemupukan yang kurang dari keperluan tanaman akan menjadikan tidak optimalnya produksi. Kelebihan pemupukan juga berarti pemborosan, yang dapat menyebabkan tanaman rentan terhadap serangan hama penyakit, dan dalam jangka lama dapat menyebabkan terjadinya pecemaran lingkungan, seperti populasi nitrat dalam air minum yang tercemar. Pemberian pupuk kandang dapat memperbaiki kondisi lingkungan pertumbuhan tanaman yang pada akhirnya mampu meningkatkan hasil produksi suatu tanaman. Bahan organik selain dapat memperbaiki fisik dan kimia tanah, juga dapat meningkatkan jumlah dan aktifitas mikroorganisme tanah.

 

 

DAFTAR PUSTAKA

Agboola, A. A.  1974.  Problem of improvement soil fertility by use of green manuring in the tropical farming systeem, pp. 147-153.  In.  Organic Material as Fertilizers.  FAO of the United Nations, Rome.

Allison, F.E., 1973. Soil Organic Matter and Its Role in Crop Production. Elsevier Sientific Publishing Co., Amsterdam VI + 637p.

Ende, B. Van den and B. K. Taylor.  1969.  Respone of Peach seedling in sand culture to factorial combination of nitrogen, phsphorus and sheep manure.  Aust. J. Of Exp. Agric.  Nn. Husb. 9 : 234-238.

Halvin, J.L. , S.M. Tisdale., W.L. Nelson, and J.D. Beaton. 1999Soil Fertility and Fertilizer. An Introduction to Nutrient Management. Prentice Hall, Inc. 499 p.

Hsieh, S.C.  and C. F. Hsieh. 1990.  The use of organic matter in crop production. Paper Presented at Seminar on “ The Use of Organic Fertilizer in Crop Production “ at Soweon, South Korea, 18-24 June 1990.

http://id.wikipedia.org/  (Diakses 10 juni 2012)

Karama A.S.  1990. Penggunaan pupuk dalam produksi pertanian. Makalah disampaikan pada Seminar Puslitbang Tanaman  Pangan, 4 Agustus 1999 di Bogor.

Kartasapoetra, G. Kartasapoetra, AG. M. M. Sutedjo. 1987. Konservasi Tanah dan Air. Bina Aksara, Jakarta.

Reksohadiprodjo, S. 1985. Produksi Tanaman Hijauan Makanan Ternak Tropik. BP, Yogyakarta.

Sangatanan, PD. dan R.L. Sangatanan. 1989. Organic Farming. 3M Book Inc., 227p

Soegiri, J., Ilyas, H. S. dan Damayanti. 1990. Mengenal Beberapa Jenis Hijauan. Direktorat Bina Produksi Peternakan Departemen Pertanian, Jakarta

Sugito, Y., Yulia N, dan Ellis N. 1995. Sistem Pertanian Organik. Fakultas Pertanian Universitas Brawijaya. Malang. 83p.

Sumarsono.  2005.  Peranan pupuk organik untuk perbaikan penampilan dan produksi hijauan rumput gajah pada tanah cekaman salinitas dan kemasaman Makalah disajikan Pada Seminar Prospek Pengembangan Peternakan Tampa Limbah, Jurusan Produksi Ternak  Fakultas Pertanian UNS, Surakarta 5 September 2005

Susetyo, S., Kismoro dan B. Suwardi. 1969. Hijauan Makanan Ternak. Direktorat Peternakan Rakyat. Dirjen Departemen Pertanian.  Jakarta

Tan, K.H. 1995. Dasar-Dasar Kimia Tanah. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press.

MAKALAH GENETIKA PCR ( Polimerase Chain Reaction )

29 Jun

MAKALAH GENETIKA

PCR ( Polimerase Chain Reaction )

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Oleh:

ARIF NURROHMAN                     (23010111120050)

NURFADLINA WIDIARTI                       (23010111120034)

PERI INDAH YANI LAOLI          (23010111120027)

SRI IRIANING                                 (23010111120023)

 

 

 

 

 

 

 

JURUSAN S-1 PETERNAKAN

FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN

UNIVERSITAS DIPONEGORO

SEMARANG

2012

Kata Pengantar

Puji syukur kehadirat Tuhan Yang Maha Esa karena nikmat dan kesempatan yang diberikannya sehingga makalah ini dapat terselesaikan sesuai dengan waktu yang telah ditentukan. Makalah ini berisi tugas mata kuliah Genetika

Makalah ini terselesaikan tidak lepas dari bantuan banyak pihak. Ucapan terima kasih penulis ucapkan kepada Bapak Seno Johari selaku dosen pengampu mata kuliah Genetika yang telah membimbing dan mengarahkan jalannya pembuatan makalah ini.

Penulis memohon maaf apabila terdapat banyak kesalahan dan kekurangan dalam penulisan makalah ini. Kritik dan saran yang membangun sangat penulis harapkan dari semua pihak demi perbaikan makalah ini dimasa yang akan datang.

 

Semarang,    Juni 2012

 

 

BAB I

PENDAHULUAN

1.1.            Latar Belakang

Genetika adalah ilmu yang mempelajari sifat-sifat keturunan (hereditas) serta segala sluk beluknya selama ilmiah. Genetika disebut juga ilmu keturunan, ilmu ini mempelajari berbagai aspek yang menyangkut pearisan sifat, bagaimana sifat keturunan ilmu itu diturunkan dari generasi kegenerasi serta variasi-variasi yang mungkin timbul didalamnya atau yang menyertainya. Pewarisan sifat tersebut dapat terjadi melalui proses seksual. Genetika berusaha membawakan material pembawa informasi untuk diwariskan (bahan genetik), bagaimana informasi tersebut di ekspresikan ekspresi genetic dan bagaimana informasi tersebut dipindahkan dari individu satu ke individu lain. PCR adalah suatu metode in vitro yang digunakan untuk mensintesis sekuens tertentu DNA dengan menggunakan dua primer oligonukleotida yang menghibridisasi pita yang berlawanan dan mengapit dua target DNA. Kesederhanaan dan tingginya tingkat kesuksesan amplifikasi sekuens DNA yang diperoleh menyebabkan teknik ini semakin luas penggunaannya.

 

1.2.            Tujuan dan Manfaat

Tujuan dan manfaat dari mempelajari materi ini yaitu dapat mengetahui kegunaan dari PCR, komponan-komponan PCR dan proses PCR.

 

BAB II

PEMBAHASAN

2.1.      Pengertian PCR (Polimerase Chain Reaction)

Reaksi berantai polimerase atau lebih umum dikenal sebagai PCR (polymerase chain reaction) merupakan suatu teknik atau metode perbanyakan (replikasi) DNA secara enzimatik tanpa menggunakan organisme. Dengan teknik ini, DNA dapat dihasilkan dalam jumlah besar dengan waktu relatif singkat sehingga memudahkan berbagai teknik lain yang menggunakan DNA. Teknik ini dirintis oleh Kary Mullis pada tahun 1983 dan ia memperoleh hadiah Nobel pada tahun 1994 berkat temuannya tersebut. Penerapan PCR banyak dilakukan di bidang biokimia dan biologi molekular karena relatif murah dan hanya memerlukan jumlah sampel yang kecil. PCR (Polimerase Chain Reaction) atau reaksi berantai polimerase adalah suatu metode in vitro yang digunakan untuk mensintesis sekuens tertentu DNA dengan menggunakan dua primer oligonukleotida yang menghibridisasi pita yang berlawanan dan mengapit dua target DNA. Kesederhanaan dan tingginya tingkat kesuksesan amplifikasi sekuens DNA yang diperoleh menyebabkan teknik ini semakin luas penggunaannya.

 

2.2.      Komponen

Selain DNA template yang akan digandakan dan enzim DNA polymerase, komponen lain yang dibutuhkan adalah:

 

  1. a.      Primer

Primer adalah sepasang DNA utas tunggal atau oligonukleotida pendek yang menginisiasi sekaligus membatasi reaksi pemanjangan rantai atau polimerisasi DNA. Jadi jangan membayangkan kalau PCR mampu menggandakan seluruh DNA bakteri E. coli yang panjangnya kira-kira 3 juta bp itu. PCR hanya mampu menggandakan DNA pada daerah tertentu sepanjang maksimum 10000 bp saja, dan dengan teknik tertentu bisa sampai 40000 bp. Primer dirancang untuk memiliki sekuen yang komplemen dengan DNA template, jadi dirancang agar menempel mengapit daerah tertentu yang kita inginkan.

  1. b.      dNTP (deoxynucleoside triphosphate)

dNTP alias building blocks sebagai ‘batu bata’ penyusun DNA yang baru. dNTP terdiri atas 4 macam sesuai dengan basa penyusun DNA, yaitu dATP, dCTP, dGTP dan dTTP.

  1. c.       Buffer

Buffer yang biasanya terdiri atas bahan-bahan kimia untuk mengkondisikan reaksi agar berjalan optimum dan menstabilkan enzim DNA polymerase.

 

 

 

 

  1. d.      Ion Logam
  • Ion logam bivalen, umumnya Mg++, fungsinya sebagai kofaktor bagi enzim DNA polymerase. Tanpa ion ini enzim DNA polymerase tidak dapat bekerja.
  • Ion logam monovalen, kalsium (K+).

 

2.3.      Prinsip Kerja

Secara prinsip, PCR merupakan proses yang diulang-ulang antara 20–30 kali siklus. Setiap siklus terdiri atas tiga tahap. Berikut adalah tiga tahap bekerjanya PCR dalam satu siklus:

  1. Tahap peleburan (melting) atau denaturasi. Pada tahap ini (berlangsung pada suhu tinggi, 94–96 °C) ikatan hidrogen DNA terputus (denaturasi) dan DNA menjadi berberkas tunggal. Biasanya pada tahap awal PCR tahap ini dilakukan agak lama (sampai 5 menit) untuk memastikan semua berkas DNA terpisah. Pemisahan ini menyebabkan DNA tidak stabil dan siap menjadi templat (“patokan”) bagi primer. Durasi tahap ini 1–2 menit.
  2. Tahap penempelan atau annealing. Primer menempel pada bagian DNA templat yang komplementer urutan basanya. Ini dilakukan pada suhu antara 45–60 °C. Penempelan ini bersifat spesifik. Suhu yang tidak tepat menyebabkan tidak terjadinya penempelan atau primer menempel di sembarang tempat. Durasi tahap ini 1–2 menit.
  3. Tahap pemanjangan atau elongasi. Suhu untuk proses ini tergantung dari jenis DNA polimerase yang dipakai. Dengan Taq-polimerase, proses ini biasanya dilakukan pada suhu 76 °C. Durasi tahap ini biasanya 1 menit.

Lepas tahap 3, siklus diulang kembali mulai tahap 1. Akibat denaturasi dan renaturasi, beberapa berkas baru (berwarna hijau) menjadi templat bagi primer lain. Akhirnya terdapat berkas DNA yang panjangnya dibatasi oleh primer yang dipakai. Jumlah DNA yang dihasilkan berlimpah karena penambahan terjadi secara ksponensial

Pada tahap denaturasi, pasangan untai DNA templat dipisahkan satu sama lain sehingga menjadi untai tunggal. Pada tahap selanjutnya, masing-masing untai tunggal akan ditempeli oleh primer. Jadi, ada dua buah primer yang masing-masing menempel pada untai tunggal DNA templat. Biasanya, kedua primer tersebut dinamakan primer maju (forward primer) dan primer mundur(reverse primer). Setelah menempel pada untai DNA templat, primer mengalami polimerisasi mulai dari tempat penempelannya hingga ujung 5’ DNA templat (ingat polimerisasi DNA selalu berjalan dari ujung 5’ ke 3’ atau berarti dari ujung 3’ ke 5’ untai templatnya). Dengan demikian, pada akhir putaran reaksi pertama akan diperoleh dua pasang untai DNA jika DNA templat awalnya berupa sepasang untai DNA.

Pasangan-pasangan untai DNA yang diperoleh pada suatu akhir putaran reaksi akan menjadi templat pada putaran reaksi berikutnya. Begitu seterusnya hingga pada putaran yang ke n diharapkan akan diperoleh fragmen DNA pendek sebanyak 2n – 2n. Fragmen DNA pendek yang dimaksudkan adalah fragmen yang ukurannya sama dengan jarak antara kedua tempat penempelan primer. Fragmen pendek inilah yang merupakan urutan target yang memang dikehendaki untuk digandakan (diamplifikasi).

Bisa kita bayangkan seandainya PCR dilakukan dalam 20 putaran saja, maka pada akhir reaksi akan diperoleh fragmen urutan target sebanyak 220 – 2.20 = 1.048576 – 40 = 1.048536 ! Jumlah ini masih dengan asumsi bahwa DNA templat awalnya hanya satu untai ganda. Padahal kenyataannya, hampir tidak mungkin DNA templat awal hanya berupa satu untai ganda. Jika DNA templat awal terdiri atas 20 untai ganda saja, maka jumlah tadi tinggal dikalikan 20 menjadi 20.970.720, suatu jumlah yang sangat cukup bila akan digunakan sebagai fragmen pelacak.

 

2.4.      Perancangan Primer

Tahapan PCR yang paling menentukan adalah penempelan primer. Sepasang primer oligonukleotida (primer maju dan primer mundur) yang akan dipolimerisasi masing-masing harus menempel pada sekuens target, tepatnya pada kedua ujung fragmen yang akan diamplifikasi. Untuk itu urutan basanya harus komplementer atau setidak-tidaknya memiliki homologi cukup tinggi dengan urutan basa kedua daerah ujung fragmen yang akan diamplifikasi itu. Padahal, kita belum mengetahui dengan pasti urutan basa sekuens target. Oleh karena itu, diperlukan cara tertentu untuk merancang urutan basa kedua primer yang akan digunakan.

Dasar yang digunakan adalah urutan basa yang diduga mempunyai kemiripan dengan urutan basa sekuens target. Urutan ini adalah urutan serupa dari sejumlah spesies/strain organisme lainnya yang telah diketahui/dipublikasikan. Sebagai contoh, untuk merancang sepasang primer yang diharapkan dapat mengamplifikasi sebagian gen lipase pada isolat Bacillus termofilik tertentu dapat digunakan informasi urutan basa gen lipase dari strain-strain Pseudomonas fluorescensP. mendocina , dan sebagainya, yang sebelumnya telah diketahui.

Urutan-urutan basa fragmen tertentu dari berbagai strain tersebut kemudian dijajarkan dan dicari satu daerah atau lebih yang memperlihatkan homologi tinggi antara satu strain dan lainnya. Daerah ini dinamakan daerah lestari (conserved area). Sebagian/seluruh urutan basa pada daerah lestari inilah yang akan menjadi urutan basa primer.

Sebenarnya, daerah lestari juga dapat ditentukan melalui penjajaran urutan asam amino pada tingkat protein. Urutan asam amino ini kemudian diturunkan ke urutan basa DNA. Dari satu urutan asam amino sangat mungkin akan diperoleh lebih dari satu urutan basa DNA karena setiap asam amino dapat disandi oleh lebih dari satu triplet kodon. Dengan demikian, urutan basa primer yang disusun dapat merupakan kombinasi beberapa kemungkinan. Primer dengan urutan basa semacam ini dinamakan primer degenerate. Selain itu, primer yang disusun melalui penjajaran urutan basa DNA pun dapat merupakan primer degenerate karena urutan basa pada daerah lestari di tingkat DNA pun tidak selamanya memperlihatkan homologi sempurna (100%).

Urutan basa pasangan primer yang telah disusun kemudian dianalisis menggunakan program komputer untuk mengetahui kemungkinan terjadinya primer-dimer akibat homologi sendiri(self-homology) atau homologi silang (cross-homology). Selain itu, juga perlu dilihat kemungkinan terjadinya salah tempel(mispriming), yaitu penempelan primer di luar sekuens target. Analisis juga dilakukan untuk mengetahui titik leleh (Tm) masing-masing primer dan kandungan GC-nya. Sepasang primer yang baik harus mempunyai Tm yang relatif sama dengan kandungan GC yang cukup tinggi.

 

2.5.      Aplikasi teknik PCR

Kary B Mullis yang telah menemukan dan mengaplikasikan PCR pada tahun 1984. Saat ini PCR sudah digunakan secara luas untuk berbagai macam kebutuhan, diantaranya:

  1. a.      Isolasi Gen

Kita tahu bahwa DNA makhluk hidup memiliki ukuran yang sangat besar, DNA manusia saja panjangnya sekitar 3 miliar basa, dan di dalamnya mengandung ribuan gen. Sebagaimana kita tahu bahwa fungsi utama DNA adalah sebagai sandi genetik, yaitu sebagai panduan sel dalam memproduksi protein, DNA ditranskrip menghasilkan RNA, RNA kemudian diterjemahkan untuk menghasilkan rantai asam amino alias protein. Dari sekian panjang DNA genome, bagian yang menyandikan protein inilah yang disebut gen, sisanya tidak menyandikan protein atau disebut ‘junk DNA’, DNA ‘sampah’ yang fungsinya belum diketahui dengan baik. Kembali ke pembahasan isolasi gen, para ahli seringkali membutuhkan gen tertentu untuk diisolasi. Sebagai contoh, dulu kita harus mengekstrak insulin langsung dari pankreas sapi atau babi, kemudian menjadikannya obat diabetes, proses yang rumit dan tentu saja mahal serta memiliki efek samping karena insulin dari sapi atau babi tidak benar-benar sama dengan insulin manusia. Berkat teknologi rekayasa genetik, kini mereka dapat mengisolasi gen penghasil insulin dari DNA genome manusia, lalu menyisipkannya ke sel bakteri (dalam hal ini E. coli) agar bakteri dapat memproduksi insulin juga. Hasilnya insulin yang sama persis dengan yang dihasilkan dalam tubuh manusia, dan sekarang insulin tinggal diekstrak dari bakteri, lebih cepat, mudah, dan tentunya lebih murah ketimbang cara konvensional yang harus ‘mengorbankan’ sapi atau babi. Untuk mengisolasi gen, diperlukan DNA pencari atau dikenal dengan nama ‘probe’ yang memiliki urutan basa nukleotida sama dengan gen yang kita inginkan. Probe ini bisa dibuat dengan teknik PCR menggunakan primer yang sesuai dengan gen tersebut.

  1. b.      DNA Sequencing

Urutan basa suatu DNA dapat ditentukan dengan teknik DNA Sequencing, metode yang umum digunakan saat ini adalah metode Sanger (chain termination method) yang sudah dimodifikasi menggunakan dye-dideoxy terminator, dimana proses awalnya adalah reaksi PCR dengan pereaksi yang agak berbeda, yaitu hanya menggunakan satu primer (PCR biasa menggunakan 2 primer) dan adanya tambahan dideoxynucleotide yang dilabel fluorescent. Karena warna fluorescent untuk setiap basa berbeda, maka urutan basa suatu DNA yang tidak diketahui bisa ditentukan.

  1. c.       Forensik

Identifikasi seseorang yang terlibat kejahatan (baik pelaku maupun korban), atau korban kecelakaan/bencana kadang sulit dilakukan. Jika identifikasi secara fisik sulit atau tidak mungkin lagi dilakukan, maka pengujian DNA adalah pilihan yang tepat. DNA dapat diambil dari bagian tubuh manapun, kemudian dilakukan analisa PCR untuk mengamplifikasi bagian-bagian tertentu DNA yang disebut fingerprints alias DNA sidik jari, yaitu bagian yang unik bagi setiap orang. Hasilnya dibandingkan dengan DNA sidik jari keluarganya yang memiliki pertalian darah, misalnya ibu atau bapak kandung. Jika memiliki kecocokan yang sangat tinggi maka bisa dipastikan identitas orang yang dimaksud. Konon banyak kalangan tertentu yang memanfaatkan pengujian ini untuk menelusuri orang tua ‘sesungguhnya’ dari seorang anak jika sang orang tua merasa ragu.

  1. d.      Diagnosa Penyakit

Penyakit Influenza A (H1N1) yang sebelumnya disebut flu babi sedang mewabah saat ini, bahkan satu fase lagi dari fase pandemi. Penyakit berbahaya seperti ini memerlukan diagnosa yang cepat dan akurat. PCR merupakan teknik yang sering digunakan. Teknologi saat ini memungkinkan diagnosa dalam hitungan jam dengan hasil akurat. Disebut akurat karena PCR mengamplifikasi daerah tertentu DNA yang merupakan ciri khas virus Influenza A (H1N1) yang tidak dimiliki oleh virus atau makhluk lainnya.

 

Gambar proses prinsip kerja PCR (Polimerase Chain Reaction)

 

 

BAB III

KESIMPULAN

Reaksi berantai polimerase atau lebih umum dikenal sebagai PCR (kependekan dari istilah bahasa Inggris polymerase chain reaction) merupakan suatu teknik atau metode perbanyakan (replikasi) DNA secara enzimatik tanpa menggunakan organisme. Secara prinsip, PCR merupakan proses yang diulang-ulang antara dua puluh sampai tiga puluh kali siklus. Setiap siklus terdiri atas tiga tahap yaitu Tahap peleburan (melting) atau denaturasi, Tahap penempelan atau annealing dan Tahap pemanjangan atau elongasi. Lepas tahap ketika, siklus diulang kembali mulai tahap satu. Akibat denaturasi dan renaturasi, beberapa berkas baru (berwarna hijau) menjadi templat bagi primer lain. Akhirnya terdapat berkas DNA yang panjangnya dibatasi oleh primer yang dipakai. Jumlah DNA yang dihasilkan berlimpah karena penambahan terjadi secara eksponensial.

 

 

DAFTAR PUSTAKA

Brown, T.A (2002) DNA in Genomes, 2nd ed.,

David, J. C, Jannet L.,Comparison of Vitek® 32 and Microlog® ML3 System for Identification of Select Biological Warfare Agents, Armed Force Institute  of Pathology, American Registry of Pathology, Washington, DC, 2001de Nogueira L., Bittrich, V.P.C., Shepherd, G. J., Lopes A. V., and Marsaioli, A. J. 2001.

 

Marlina, Radu, S., Kqueen, C. Y., Napis, S., Zakaria, Z., Mutalib, S. A. and Nishibuchi, M. Occurrence of tdh and trh genes in Vibrio parahaemolyticus isolated from Corbicula moltkiana Prime in West Sumatera, Indonesia. Southeast Asian Journal of Tropical Medical Public Health Vol.38 No. 2 March 2007.

 

Marlina, Zulqifli, Anamerta, L., Revadiana, I., Radu, S., Kqueen, C. Y. and Nishibuchi, M. Identification of Vibrio parahaemolyticus from clinical samples in West Sumatera Using Polymerase Chain Reaction Methods. Acta Pharmaceutica Indonesia 31 (2): 2007, 96-99.

 

Retnoningrum, D.S. 1997. Penerapan Polymerase Chain Reaction (PCR) untuk diagnosis penyakit infeksi. Jurusan Farmasi FMIPA. Bandung: ITB.

LAPORAN RESMI PRAKTIKUM BIOKIMIA DASAR

29 Jun

 

LAPORAN RESMI

PRAKTIKUM BIOKIMIA DASAR

 

 

 

 

 

 

Oleh :

Kelompok VA

Ardian Ozzy Wianto             23010111120007

Ghina Meriyana Dewi          23010111120036

Ridha Pramesthi                   23010111120043

Arif Nurrohman                   23010111200050

Siti Aminah                            23010111140350

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN

UNIVERSITAS DIPONEGORO

SEMARANG

20012

BAB I

PENDAHULUAN

Karbohidrat atau sakarida adalah polihidroksi aldehida atau polihidroksi keton, yang pada umumnya mempunyai rumus umum Cn(H2O)n.Pencernaan utama karbohidrat terjadi didalam usus halus dan enzim yang berperan adalah amilopsin, yaitu enzim amilase yang berasal dari pankreas, dan enzim-enzim disakaridase yang dihasilkan oleh sel-sel mukosa usus sendiri.Protein dicerna menjadi asam-asam amino yang diabsorbsi kedalam vena porta dan kemudian diangkut kehati untuk disimpan menjadi cadangan asam-asam amino. Proses pencernaan lemakadalah asam lemak, gliserol, monogliserida, digliserida, serta sisa trigliserida di dalam usus, lemakdiubah dalam bentuk emulsi. Prinsip utama pembuatan asam laktat dengan cara fermentasi adalah pemecahan laktosa menjadi bentuk monosakaridanya dan dari monosakarida tersebut dengan bantuan enzim yang dihasilkan oleh Lactobacillus sp. akan diubah menjadi asam laktat.

Tujuan praktikum biokimia ini adalah mengetahui pencernaan amilum oleh amilase saliva, ekstrak pankreas dan asam, pencernaan protein oleh pepsin dan enzim protease pankreas, pencernaan lemak oleh ekstrak pankreas serta mengetahui kadar total asam pada susu dan tape. Manfaat praktikum biokimia ini adalah mengetahui pencernaan amilum oleh amilase saliva dan ekstrak pankreas dan asam, pencernaan protein oleh pepsin dan enzim protease pankreas, pencernaan lemak oleh ekstrak pankreas serta mengetahui kadar total asam pada susu dan tape.

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1.      Karbohidrat

2.1.1.   Pengertian Karbohidrat

Karbohidrat pertama kali dikemukakan oleh para ahli di perancis,nama tersebut diberikan untuk golongan senyawa-senyawa organik yang tersusun atas unsur karbon, hidrogen, dan oksigen (Sumardjo, 2009). Kata karbohidrat timbul karena rumus molekul senyawa ini dapat dinyatakan sebagai hidrat dari karbon. Contohnya, glukosa memiliki rumus molekul C6H12O6 yang dapat ditulis C6(H2O)6. Meskipun jenis rumus ini tidak berguna dalam mempelajari  kimia karbohidrat,nama kuno ini tetap bertahan (Hart, 2003).

Pengertian karbohidrat yaitu suatu polihidroksi aldehida, polihidroksi keton atau zat yang memberikan senyawa seperti itu jika dihidrolisis. Kimiawi karbohidrat pada dasarnya merupakan kimia gabungan dari dua gugus fungsi, yatiu gugus hidroksil dan gugus karboksil(Hart, 2003). Karbohidrat merupakan senyawa organikyang paling banyak terdapat dialam. Hampir seluruh tanaman dan hewan mensintesis dan metabolisme karbohidat. Karbohidrat disintesis dalam tanaman selama fotosintesis. Melalui proses kompleks, sinar matahari mengubah CO2 dari udara dan H2O dari daam tanah (dengan tekanan osmosis diangkut ke-hijau daun-klorofil) menjadi glukosa (Riswiyanto,2003).

Molekul karbohidrat terdiri atas atom-atom karbon, hidrogen dan oksigen. Jumlah atom hidrogen dan oksigen merupakan perbandingan 2:1 seperti pada molekul air. Sebagai contoh molekul glukosa mempunyai rumus C6H12O6,sedangkan rumus sukrosa C12H22O11 (Poedjiadi dan Supriyanti, 2006).  Sebagian besar mikroorganisme mengoksidasi glukosa menjadi karbondioksida, air dan energi yang diperlukan leh sel-selnya. Senyawa karbohidrat seperti gula dan pati berada dalam makanan, sedangan sellulosa terdapat dalam kayu, kertas, dan katun. Semuanya merupakan karbohidrat yang mempunyai kemurnian relatif tinggi. (Riswiyanto, 2003).

2.1.2.   Klasisifikasi Karbohidrat

Klasifikasi karbohidrat umumnya didasarkan atas kompleksitas struktur kimia. Berdasarkan kompleksitasnya, karbohidrat dibedakan atas karbohidrat sederhana yang lebih dikenal sebagai monosakarida, dan karbohidrat majemuk yang meliputi oligosakaridan dan polisakarida. Karbohidrat sederhana (simple carbohydrate), manosa, atau monosakarida, adalah karbohidrat yang molekulnya lebih kecil dan susunannya lebih sederhana dibandingkan dengan molekul karbohidrat yang lain. Molekul karbohidrat ini tidak bisa diperkecil lagi dengan cara hidrolisis (Sumardjo, 2009). Karbohidrat digolongkan menurut strukturnya sebagai monosakarida, oligosakarida, atau polisakarida. Istilah sakarida berasal dari kata latin (sakarum, gula) dan merujuk pada rasa manis dari beberapa karbohidrat sederhana. Ketiga golongan karbohidrat ini berkaitan antara satu dengan lainnya lewat hidrolisis (Hart, 2003).

2.1.2.1. Monosakarida, monosakarida ialah karbohidrat yang tidak dapat dihidrolisis menjadi senyawa yang lebih sederhana lagi. Monosakarida digolongkan berdasarkan jumlah atom karbon yang ada (triosa, tetrosa, pentosa, heksosa, dan seterusnya) dan berdasarkan apakah gugus karbonil yang ada sebagai aldehida (aldosa) atau sebagai keton (ketosa) (Hart,2003). Monosakarida yang umum mempunyai rumus empiris (CH2O)n, dimana n=3 atau jumlah yang lebih besar lainnya (Lehninger, 1982).

2.1.2.2.Disakarida, disakarida adalah oligosakarida yang tersusun atas dua satuan monosakarida. Hidrolisis molekul disakarida menghasilkan2 molekul monosakarida. Contoh (+)maltosa,(+)sellobiosa, (+)laktosa dan (+)sukrosa.  (Sumardjo,2009). Contoh disakarida yang banyak terdapat d ialam dan telah banyak diketahui sifat dan pemakaiannya adalah maltosa, selobiosa, laktosa, dan sakarosa. Maltosa diperoleh dari hidrolisi amilum oleh pengaruh enzim amilase. Maltosa terdapat dalam berbagai jenis padi–padian yang sedang berkecambah, sehingga maltosa disebut gula kecambah (malt sugar). Selobiosa diperoleh sebagai hasil antara hidrolisis selulosa oleh pengaruh enzim selulase. Hidrolisis selobiosaoleh pengaruh basa encer atau asam mineral encer akan menghasilkan dua molekul glukosa (Sumardjo, 2009). Hidrolisis selobiosa lebih lanjut hanya enghasilkan D-glukosa. Selobiosa ialah merupakan isomer maltosa (Hart, 2003). Laktosa merupakan gula utama dalam ASI dan susu sspi (4 sampai 8% laktosa). Hidrolisis laktosa menghasilkan D-galaktosa dan D-glukosa dan jumlah mol yang ekuivalen (Hart, 2003). Sukrosa atau sakarosa banyak diperoleh dari tebu, oleh karena itu sukrosa disebut gula tebu (cane sugar). Disakarida ini larut dalam air tetapi sukar larut dalam alkohol. Struktur sukrosa tersusun atas residu unit α–D–glukopiranosa yang mengikat residu unit α-D-fruktofuranosa. (Sumardjo, 2009).

 

2.1.2.3.Oligosakarida, oligosakarida atau karbohidrat majemuk (compound carbohidrate) mempunyai susunan yang lebih kompleks diabndingkan dengan susunan karbohidrat sederhana. Karbohidrat majemuk yang tersusun atas sedikit satuan monosakarida disebut oligosakarida, sedangkan yang tersusun atas banyak satuan monosakarida disebut polisakarida (Sumardjo, 2009). Karbohidrat majemuk terdiri atas disakarida dan polisakarida. Maltosa, laktosa, selobiosa, sakarosa adalah empat contoh disakarida yang banyak terdapat di alam dan telah banyak diketahui sifat pemakainnya (Sumardjo, 2009). Polisakarida yang paling banyak dijumpai pada dunia tanaman yaitu pati dan selulosa (Lehninger, 1982).

2.1.2.4.Polisakarida, polisakarida juga dikenal sebagai poliosa merupakan karbohidrat majemuk yang mempunyai susunan komplek dengan berat molekul yang besar. Makromolekul ini merupakan polimer monosakarida atau polimer turuna–turunan monosakarida. Polisakarida umunya hanya terbentuk satu jenis monosakarida atau turunan monosakarida. Rantai polimer polisakarida dapat lurus atau bercabang. Rasa polisakarida tidak manis. Polisakarida tidak mereduksi pereaksi benedict atau pereaksi fehling. Contoh polisakarida yaitu amilosa, amilopektin, dan selulosa(Sumardjo, 2009).


 

2.1.3.   Pencernaan Karbohidrat

            Pencernaan utama karbohidrat terjadi didalam usus halus dan enzim yang berperan adalah amilopsin, yaitu enzim amilase yang berasal dari pankreas, dan enzim-enzim diasakaridase yang dihasilkan oleh sel-sel mukosa usus sendiri.Kerja amilopsin identik dengan kerja ptialin.Namun, waktu didalam usus lebih lama sehingga lebih banyak amilum yang diubah menjadi maltosa.Maltosa yang terbentuk ini dipengaruhi oleh maltase sehingga terhidrolisis menjadi glukosa-glukosa. Gula meja, gula tebu, sakarosa, atau sukrosa akan dipengaruhi oleh enzim sakarase sehingga terhidrolisis menjadi glukosa dan fruktosa. Jadi, hasil akhir pencernaan karbohidrat adalah monosakarida(glukosa, fruktosa, dan galaktosa) yang kemudian diserap melalui mukosa usus halus, dibawa kesistem darah vena portal, kemudian diteruskan ke hati (Sumardjo, 2009).

2.1.4.   Enzim Pencerna Karbohidrat

Enzim-enzim dalam pencernaan karbohidrat adalah karbohidrase atau sakaridase merupakan kelompok enzim yang memecah atau menghidrolisis karbohidrat atau sakarida.Enzim yang termasuk dalam golongan ini adalah amylase dan disakaridase. Amilase merupakan enzim yang berperan dalam proses hidrolisis amilum, yaitu suatu polisakarida yang terdiri atas amilosa dan amilopektin. Amilase dibedakan atas endoamilase dan eksoamilase. Endoamilase yang dikenal sebagai α-amilase, mengatalisis pemutusan ikatan glikosida α-1,4 molekul amilum secara acak dari dalam. Hasil hidrolisanya adalah dekstrin. Eksoamilase yang biasanya disebut β-amilase, mengatalisis pemutusan ikatan glikoseida α-1,4 molekul amilum dari ujung molekul yang tidak tereduksi. Jadi, pemutusannya dari arah luar. Enzim ini tidak memutus ikatan glikosoda β-1,4 dan ikatan glikosida α-1,6. Disakaridase adalah enzim yang mengatalisasi hidrolisis disakarida atau biosa.Bekerja pada pH basa dan hasil hidrolisisnya adalah monosakarida.Pada usus, ada tiga disakarida yaitu laktase, sakarase, dan maltase. Laktase enzim ini mengatalisis hidrolisis laktosa atau gula susu menjadi glukosa dan galaktosa. Dalam saluran cerna, laktase merupakan enzim yang penting karena dapat mnegubah gula susu yang relatih sukar larut dalam air menjadi monsakarida yang mudah larut. Sakaraseberperan dalam mengatalisishidrolisis sakarosa atau sukrosa menjadi glukosa dan fruktosa.Maltase mengatalisasi hidrolisis maltosa atau gula kecambah menjadi dua molekul glukosa. Saluran pencerna,enzim ini meneruskan kerja enzim amilase.  Maltosa yang diperoleh dari hidrolisis amilum akibat pengaruh enzim amilase akan dipecah oleh maltase menjadi glukosa dan kemudian diadsorbsi (Sumardjo, 2009).

2.1.5.   Fungsi Karbohidrat

            Fungsi pokok karbohidrat yaitu menyediakan energi untuk proses-proses dalam tubuh tersebut. Sebagai tambahan mengenai fungsi-fungsi pokok karbohidrat, dapat dikemukakan bahwa fungsi karbohidrat yaitusumber energi untuk badan, sumber lemak badan, sumber lemak air susu, sumber gula air susu, sumber glikogen tubuh, sumber gula darah, sumber bagian-bagian kerangka karbon untuk sintesa protein, dan sumber monosakarida dalam struktur polisakarida dan asam nukleat tubuh (Tillman,et al. 1991).

2.2.      Protein

2.2.1.   Pengertian Protein

Kata protein berasal dari kata protos atau proteos yang berarti pertama atau utama.Protein merupakan komponen penting atau komponen utama sel hewan atau manusia. Sel tersebut merupakan pembentuk tubuh kita, maka protein yang terdapat dalam makananberfungsi sebagai zat utama dalam pembentukan dan pertumbuhan tubuh (Poedjiadi dan Supriyanti, 2006).

Protein adalah makromolekul yang paling berlimpah didalam sel hidup dan merupakan 50% atau lebih berat kering sel. Protein ditemukan didalam sel dan semua bagian selprotein juga amat bervariasi, ratusan jenis yang berbeda dapat ditemukan dalam satu sel (Lehninger, 1982).Protein adalah polipeptida yang terbentuk secara alami dengan berat molekul lebih besar dari 5000. Makromolekul ini mempunyai keanekaragaman sifatfisik, mulai dari enzim-enzim yang dapat larut dalam air sampai keratin jaringan rambut dan jaringan dan jaringan tanduk yang tidak dapat larut dalam air. Struktur dan sifat protein bergantung pada sekuens asam amino dalam polipeptida. Fungsi protein ditentukan oleh konformasinya, atau pola lipatan tiga dimensi yang merupakan pola dari rantai polipeptida (Kuchel dan Ralston, 2006).

 

 

2.2.2.   Klasifikasi Protein

Berdasarkan komposisi atau komponen penyusunnya protein dibedakan atas protein sedehana (simple protein) dan protein majemuk (konjugatit protein). Protein sederhana hanya tersusun atas asam alfa amino sehingga pada hidrolisisnya secara sempurna hanya akan menghasilkan asam alfa amino penyusunnya saja. Protein sederhana yang larut dalam air yaitu albumin mengandung belerang tetapi miskin akan residu asam amino glisin. Pseudoglobulin merupakan fraksi globulin yang larut dalam air dan menggumpal apabila dipanaskan. Protamin merupakan protein yang larut dalam air, amonia encer asam encer dan basa encer. Histon merupakan molekulnya lebih sederhana dan larut dalam air serta menggumpal apabila dipanaskan. Protein sederhana yang larut tidak larut dalam air yaitu euglobulin merupakan protein yang tidak larut dalam air, tetapi larut dalam larutan garam encer. Glutelin adalah protein yang tidak larut dalam air juga tidak larut dalam pelarut netral. Prolamin tidak larut didalam alkohol absolut, pelarut netral dan air serta tidak menggumpal apabila dipanaskan. Protein majemuk adalah protein yang tersusun atas protein sederhana dan zat non protein lainnya. Protein majemuk terdiri dari glikoprotein, lipoprotein, nukleoprotein, fosfoprotein, kromoprotein (Sumardjo, 2009).

Protein berdasarkan fungsi dibagi menjadi golongan enzim, protein cadangan, protein transport, protein kontraktil, toxin, hormon dan struktural.Protein berdasarkan kelarutannya dalam zat pelarut tertentu dibagi menjadi albumin, globulin, prolamin dan glutelin. Protein ditinjau dari sudut konformasinya protein bias dibagi dua golongan yaitu bentuk serabut (fibrous)dan globular. Protein berdasarkan stukturnya dibagi menjadi struktur primer, struktur sekunder, struktur tersier dan struktur kuartener (Martoharsono, 2006).

Ditinjau dari strukturnya protein dapat dibagi dalam dua golongan besar, yaitu golongan protein sederhana dan protein gabungan.Protein sederhana ialah protein yang hanya terdiri atas molekul-molekul asam amino. Protein sederhana dapat dibagi dalam dua bagian menerut bentuk molekulnya, yaitu protein fiber dan protein globular. Protein fiber merupakan molekul protein ini terdiri atas beberapa rantai polipeptida yang memanjang dan dihubungkan satu dengan lain oleh beberapa ikatan silang hingga merupakan bentuk serat atau serabut yang stabil. Protein globular merupakan protein yang umumnya berbentuk bulat atau elips dan terdiri atas rantai polipeptida yang berlipat,adapun jenis protein globular yaitu albumin, globulin, histon dan protamin (Poedjiadi dan Supriyanti, 2006).

Protein gabungan ialah protein yang berikatan dengan senyawa yang bukan protein. Gugus bukan protein ini disebut gugus prostetik.Jenis protein gabungan antara lain mukoprotein, glikoprotein, lipoprotein, dan nukleoprotein. Mukroprotein adalah gabungan protein dan karbohidrat dengan kadar lebih dari 4 % dihitung sebagai heksosamina. Glikoprotein terdiri atas protein dan karbohidrat tetapi dengan kadar heksosamina kurang dari 4 %. Lipoprotein adalah gabungan antaraprotein yang larut dalam air dengan lipid.Nukleoprotein terdiri atas protein yang bergabung dengan asam nukleat (Poedjiadi dan Supriyanti, 2006).

 

 

2.2.3.   Pencernaan Protein

            Protein dicerna menjadi asam-asam amino yang diabsorbsi kedalam vena porta dan kemudian diangkut kehati untuk disimpan menjadi cadangan asam-asam amino, yang dapat dipergunakan untuk sintesa protein jaringan dan senyawa nitrogen penting lainnya.Asam-asam amino hasil katabolisme jaringan juga terdapat dalam darah. Asam amino yang berlebihan akan dideaminasi oleh hati menjadi asam ammonia dan asam-asam alfa-keto. Amonia dapat dipergunakan untuk meng-aminasi asam-asam keto menjadi asam-asam amino, tetapi kebanyakan dirubah menjadi urea dan dikeluarkan melalui urine atau dikembalikan ke traktus alimentarius melalui air liur. Amonia mungkin juga diabsorbsi dari retikulo-rumen ruminansia ke vena porta dan diubah hati menjadi urea dst (Tillman. et al, 1991).Protein yang terdapat dalam makanan kita dicernakan dalam lambung dan usus menjadi asam-asam amino yang diabsorpsi dan dibawa oleh darah ke hati.Asam amino sebgaian diambil oleh hati, sebagian lagi diedarkan ke dalam jaringan-jaringan di luar hati.Protein dalam sel-sel tubuh dibentuk dari asam amino. Kelebihan asam amino dari jumlah yang digunakan untuk biosintesis protein, kelebihan asam amino akan diubah menjadi asam keto yang dapat masuk kedalam siklus asam sitrat atau diubah menjadi urea. Hati merupakan organ tubuh dimana terjadi reaksi katabolisme dan anabolisme. Asam amino yang dibuat dalam hatimaupun yang dihasilkan dari proses katabolisme protein dalam hati, dibawah oleh darah ke dalam jaringan untuk digunakan. Proses anabolik maupun katabolik juga terjadi dalam jaringan diluar hati.  Asam amino yang terdapat dalam darah berasal dari tiga sumber, yaitu absorbsi melalui dinding usus, hasil penguraian protein dalam sel dan hasil sintesis asam amino dalam sel. Banyaknya asam amino dalam darah tergantung pada keseimbangan antara pembentukan asam amino dan penggunaannya. Hati berfungsi sebagai pengatur kadar asam amino dalam darah (Poedjiadi dan Supriyanti, 2006).

2.2.4.   Enzim Pencerna Protein

   Enzim mempunyai gugus bukan protein, jadi termasuk golongan protein majemuk. Enzim semacam ini (holoenzim) terdiri atas protein (apoenzim) dan suatu gugus bukan protein sebagai contoh enzim katalase terdiri atas protein dan feriprotorfirin ada juga enzim yang terdiri atas enzim protein dan logam, misalnya askorbat oksidase adalah protein yang mengikat tembaga(Poedjiadi dan Supriyanti, 2006). Enzim merupakan biokatalisator yang sangat efektif dalam meningkatkan kecepatan reaksi kimia spesifik, artinya pada kondisi tanpa enzim reaksi biokimia berlangsung secara lambat. Enzim dalam sistem pangan dapat menyebabkan perubahan kualitas, seperti warna, tekstur, rasa, dan aroma selama penyimpanan. Enzim banyak digunakan dalam proses pengolahan di Industri pangan, misalnya dalam proses pemecahan ikatan pada protein. Enzim bekerja pada substrat yang spesifik. Protease merupakan enzim yang berperan dalam reaksi yang melibatkan pemecahan pada protein. Enzim ini memecah protein dengan bantuan air, sehingga dikelompokkan dalam enzim hidrolase. Protease dapat dihasilkan dari hewan, tanaman, atau mikroba secara ekstraseluler ataupun intraseluler (Kusnandar,2010). Pada pencernaan protein terdapat enzim-enzim, antara lain: enzim proteolitik pankreas yang berasal dari cairan pankreas. Enzim tripsin yang merupakan campuran dari sejumlah enzim-enzim oligopeptidase serta pepsin yang berperan sebagai biokatalisator (Hawab, 2004).

 

2.2.5.   Fungsi Protein

            Protein dan asam nukleat mempunyai fungsi dalam tubuh sebagai berikut membangun dan menjaga atau memelihara protein jaringan dan organ tubuh, menyediakan asam-asam amino makanan, menyediakan energi dalam tubuh, menyediakan sumber lemak badan, menyediakan sumber gula darah, sumber glikogen darah, sumber enzin tubuh, sumber bebeberapa hormon tubuh menyediakan bangunan dasar untuk setidak-tidaknya satu vitamin B kompleks, menyediakan komponen tertentu (Tillman, et al., 1991). Protein mempunyai beberapa fungsi, diantaranya ialah sebagai biokatalisator (enzim), protein cadanngan, biomol pertranspor bahan, struktur dan proktetif, tetapi pada umumnya protein dikenal sebagai bagian dari makanan yang digunakan sebagai pengganti jaringan sel (Martoharsono, 2006).

 

2.3.      Lemak

2.3.1.   Pengertian Lemak

            Lipid merupakan penyusun tumbuhan atau hewan yang dicirikan oleh sifat kelarutannya (Hart, 2003). Lipida adalah senyawa organik berminyak atau berlemak yang tidak larut didalam air, yang dapat diekstrak dari sel dan jaringan oleh pelarut nonpolar, seperti kloroform, atau eter (Lehninger, 1982). Lemak dan minyak merupakan zat makanan yang penting untuk menjaga tubuh manusia selain itu lemak dan minyak juga merupakan sumber energi yang lebih efektif dibanding dengan karbohidrat dan protein (Winarno, 1986). Lemak adalah lipida sederhana, yaitu ester dari tiga asam-asam lemak dan trihidro alkohol gliserol. Istilah lemak meliputi lemak-lemak dan minyak-minyak dan perbedaanya adalah pada sifat fisiknya yaitu lemak adalah solid (padat) pada temperatur kamar 20 , sedangkan minyak pada temperatur tersebut berbentuk cair. Trigliserilda yang sederhana adalah senyawa yang mengandung gliseol dan 3 asam lemak.Struktur lemak yaitu :

H2C                 OH

HC                  OH + 3R                     COOH

H2C                 OH

            Lipid mengandung unsur-unsur karbon hidrogen dan oksigen, sehingga merupakan sumber energi. Lipida mengandung lebih banyak proporsi intramolekuler karbon dan hidrogen, tetapi lebih sedikit oksigen dibanding karbohidrat, maka konsentrasi energinya relatif tinggi ( Tillman, et al., 1994).

2.3.2.   Klasifikasi Lemak 

            Senyawa-senyawa yang termasuk lipid ini dapat terbagi dalam beberapa golongan, ada beberapa cara penggolongan yang dikenal. Bloor membagi lipid dalam tiga golongan besar (Lehninger, 1982). Klasifikasi lipida didasarkan atas kerangka dasarnya dan dibedakan menjadi lipida kompleks dan lipida sederhana. Golongan pertama dapat dihidrolisis sedangkan golongan kedua tidak dapat dihidrolisis (Martoharsono, 2006).

2.3.2.1. Lemak sederhana, lipid sederhana adalah yaitu ester asam lemak dengan berbagai alkohol, contohnya lemak atau gliserilda dan lilin (waxes). Lipid yang paling sederhana dan paling banyak mengandung asam lemak sebagai unit penyusun adalah triasilgliserol, juga sering kali dinamakan lemak, lemak netral, atau trigliserilda. Triasilgliserol adalah ester dari alkohol gliserol dengan tiga molekul asam lemak. Gliserol adalah komponen utama dan lemak penyimpan atau depot lemak pada sel tumbuhan dan hewan, tetapi umumnya tidak dijumpai pada membran (Lehninger, 1982). Lipida yang disebutkan diatas semuanya dapat dihidrolisis dengan alkali dalam keadaaan panas yang selanjutnya menghasilkan sabun, ada golongan lipida lain yang tidak dapat diubah menjadi sabun senyawa itu termasuk steroida dan terpena (Martoharsono, 2006).

2.3.2.2.Lemak kompleks, lemak gabungan yaitu ester asam lemak yang mempunyai gugus tambahan contohnya fosfolipid, serebrosida (Poedjiadi dan Supriyanti, 2006). Lipida kompleks dibagi menjadi triasigliserol, fosfolipida, sfingolipida, dan lilin (Martoharsono, 2006).

 

2.3.3.   Pencernaan Lemak

Pencernaan senyawa-senyawa triasilgliserol dimulai di dalam usus halus, kedalam organ inilah zimogen prolipase dikeluarkan oleh pankreas, di dalam usus halus tersebut, zimogen kemudian diubah menjadi lipase yang aktif, yang dengan adanya garam-garam empedu dan protein khusus yang disebut kolipase mengikat tetesan-tetesan senyawa triasil gliserol dan mengkatalisis pemindahan hidrolitik satu atau dua residu asam lemak bagian luar sehingga dihasilkan suatu campuran asam-asam lemak bebas (sebagai senyawa sabun dengan Na+ atau K+) dan senyawa 2-monoasilgliserol. Sebagian kecil dari senyawa triasil gliserol masih ada yang tetap tidak dihirolsis. Senyawa sabun asam lemak dan senyawa asil gliserol yang tidak terpecahkan diemulsifikasi menjadi bentuk butir-butir halus oleh peristaltis, yaitu suatu gerakkan mengaduk pada usus, dibantu oleh garam-garam empedu dan monoasil gliserol, yang merupakan molekul-molekul amfipatik dan memberikan efek detergen (Lehninger, 1982).

Asam-asam lemak dan senyawa-senyawa monoasilgliserol di dalam butir-butir cairan tersebut diserap oleh sel-sel usus, dimana sebagian besar senyawa-senyawa tersebut dirangkai kembali menjadi triasilgliserol. Senyawa-senyawa triasilgliserol tersebut tidak masuk ke dalam pembuluh darah kapiler, tetapi masuk ke dalam lakteal, yaitu kelenjar pembuluh limpa yang kecil didalam vili. Emulsifikasi dan pencernaan lemak di dalam usus halus dimungkinkan dengan adanya garam-garam empedu. Garam-garam empedu manusia yang terutama adalah natrium-glikokolat dan natrium taurokolat, turunan dari asam kolat, adalah empat jenis asam empedu utama yang terdapat dalam jumlah besar. Garam-garam empedu merupakan bahan pengemulsi kuat yang disekresikan oleh hati ke dalam empedu yang selanjutnya mengeluarkan isinya ke bagian atas usus halus. Setelah asam-asam lemak dan senyawa monoasilgliserol dari butir lemak yang teremulsi diserap di dalam bagian bawah usus halus, garam-garam empedu yang membantu proses ini juga diserap kembali. Garam-garam empedu tersebut kembali ke hati untuk kemudian digunakan lagi berkali-kali, dengan demikian garam-garam empedu secara tetap berdaur di antara hati dan usus kecil. Garam-garam empedu sangat penting di dalam penyerapan tidak hanya bagi zat-zat triasilgliserol tetapi juga bagi semua makanan dan lemak yang dapat larut. Apabila terjadi kekurangan dalam penbentukan dan pengeluaran garam-garam empedu yang terjadi pada beberapa penyakit, lemak-lemak yang tidak tercerna dan tidak terserap akan tampak pada tinja, dalam keadaan-keadaan seperti itu vitamin-vitamin yang larut dalam lemak, A, D, E, dan K tidak terserap secara sempurna dan dapat mengakibatkan kekurangan vitamin A (Lehninger, 1982).

2.3.4.   Enzim Pencerna Lemak

Enzim-enzim dalam pencernaan lemak yaitu enzim dari mikroorganisme yang berfungsi mencerna lemak menjadi vitamin B. Lipase yang disekresikan oleh getah lambung dan asam lambung yang berfungsi mencerna lemak menjadi asam lemak gliserol. Steapsin (lipase) dalam duodenum yang berfungsi mencerna lemak menjadi asam lemak dan gliserol. Sekresi empedu (hati) dalam usus halus, mencerna lemak menjadi emulsi lemak  (Winarno, 1986).

2.3.5.   Fungsi Lemak

Lemak sangat penting dengan adanya didalam makanan, sehingga beberapa dapat menyimpulkan bahwa kelompok lemak mempunyai nilai makanan khusus. Lemak dibutuhkan sebagai sumber energi yaitu asam-asam lemak esensial. Koline dalam lemak mempunyai fungsi lain sebagai berikut yaitu sumber prostaglandin (asam-asam lemak esensial adalah bahan asalnya), sebagai karier vitamin-vitamin yang larut dalam lemak, sebagai sumber energi karena kadar energi lemak yang tinggi maka zat ini dapat menaikkan energi makanan tanpa menambah volume terlalu banyak (Tillman, et al., 1991). Lipida mempunyai beberapa fungsi diantaranya sebagai komponen struktural membran, sumber energi, lapisan pelindung, dan vitamin dan hormon (Martoharsono, 2006).

 

2.4. Penentuan Kadar Asam Total pada Susu dan Tape

            Susu merupakan bahan baku yang sangat potensial untuk menghasilkan produk-produk yang menggunakan teknologi mikrobial, karena susu menjadi media yang sangat baik untuk pertumbuhan mikroorgnisme (Hidayat et al,2006). Prinsip utama pembuatanasam laktat dengan proses fermentasi adalah proses pemecahan laktosa menjadi bentuk monosakaridanya dan dari monosakarida tersebut dengan bantuan enzim yang dihasilkan oleh Laktobacillus sp.akan diubah menjadi asam laktat (Budiyanto,2003).

            Tape ubi kayu merupakan makanan selingan yang cukup populer di indonesia. Pada dasarnya ada dua tipe tape yaitu tape ketan dan tape ubi kayu. Tape sebagai produk makanan yang cepat rusak karena adanya fermentasi lanjut setelah kondisi optimum fermentasi tercapai. Namun jika disimpan di tempat yang dingin maka akan dapat bertahan selama 2 minggu (Hidayat etal,2006).

2.4.1.   Asam Laktat                                                                                                 

Asam laktat didefinisikan sebagai campuran dari asam laktat dan hibrida asam laktat yang mengandung tidak kurang 85 % dan tidak lebih dari 92 % asam laktat. Prinsip utama pembuatan asam laktat dengan proses fermentasi adalah pemencahan laktosa menjadi bentuk monosakaridanya dan monosakrida tersebut dengan bantuan enzim yang dihasilkan oleh lactobacillus sp. Akan diubah menjadi asam laktat. Asam laktat tidak berbau tidak berwarna dan bersifat higroskopis pada suhu kamar. Sifat fisik asam laktat antara lain adalah bobot jemisnya 1,249; bobot molekulnya 90,08; titk bekunya 16,8 , dan titk didihnya 122  pada tekanan mmHg. Sifat kimiawinya di antaranya adalah dapat larut dalam eter, alkohol, gliserin, dan air. Asam laktat tidak larut dalam kloroform, eter disulfida, dan karbon disulfida(Budiyanto,2003).

 

2.4.2.   Asam Asetat

            Pembuatan asam asetat melalui proses asetifikasi dari alkohol menjadi asam asetat, ada dua metode pembuatannya yaitu metode lambat yang biasa dilalakukan dirumah-rumah atau dibiarkan begitu saja dan dikenal dengan metode prancis (French Methode) dan metode Orleans. Metode yang kedua yaitu metode cepat dengan menggunakan generator dan proses asetifikasi kultur terendam (submerged acetification proces) (Budiyanto,2003).

 

 

 

 

 

BAB III

METODOLOGI

            Praktikum BiokimiaDasar dengan materi Pencernaan Karbohidratdan Pencernaan Lemak dilaksanakan pada hari Sabtu, tanggal 14April 2012 pada pukul 15.00 sampai dengan pukul 17.00 WIB, sedangkan materi Pencernaan Protein dan Kadar Asam Total dilaksanakan pada hari Sabtu tanggal 21 April 2012 pukul 15.00 sampai dengan pukul 17.00 WIB. Semua praktikumini  bertempat di Laboratorium Fisiologi dan Biokimia Ternak, Fakultas Peternakan dan Pertanian, Universitas Diponegoro, Semarang.

3.1.      Materi

Alat yang digunakan dalam praktikum pencernaan karbohidrat, pencernaan protein, pencernaan lemak, dan penentuan kadar asam total adalah gelas beker digunakan untuk menampung air kumuran, kertas saring untuk menyaring air kumuran, tabung reaksi yang digunakan sebagai tempat untuk mereaksikan zat-zat yang telah dicampur, rak tabung reaksi untuk menempatkan tabung reaksi, inkubator sebagai tempat terjadinya reaksi, diprogram suhunya seperti dalam saluran pencernaan, pipet digunakan untuk mengambil larutan Iod, lampu bunsen untuk mendidihkan saliva dan mendidihkan larutan, silet untuk memotong albumin telur, penjepit untuk menjepit tabung reaksi, buret dan statif digunakan untuk menitrasi bahan praktikum, gelas erlenmeyer digunakan untuk menempatkan ekstrak tape dan ubi kayu, labu ukur digunakan untuk menempatkan larutan ekstrak tape dan ubi kayu, pengaduk magnetik digunakan untuk mengaduk larutan ekstrak tape dan ubi kayu, neraca ohaus digunakan untuk menimbang berat tape dan ubi kayu.

Bahan yang digunakan pada praktikum karbohidratyaitu susu, tape, larutan Phenolftalein (PP) 1%, larutan NaOH 0,1 N, minyak goreng, aquades, larutan ekstrak pankreas, cairan empedu, larutan HCL 0,1 N, larutan HCL 0,45%, larutan amilum 1% yang telah dimasak, larutan lugol, larutan NaCl 0,1% dan saliva. Bahan yang digunakan pada praktikum protein antara lain potongan gumpalan putih telur yang tipis dan berbentuk kotak sebagai parameter terjadinya pencernaan protein, larutan pepsin sebagai enzim pencerna protein, larutan ekstrak pankreas sebagai emulgator, larutan HCL 0,45% dan HCL 0,1 N sebagai reaktan asam, larutan NaOH 0,1 N sebagai reaktan basa. Bahan yang digunakan pada praktikum lemak antara lain minyak goreng, aquades, larutan ekstrak pankreas, cairan empedu, larutan fenolftalein (PP) 1% dan larutan NaOH 0,1N. Sedangkan bahan yang digunakan pada praktikum penentuan kadar asam totaladalah susu segar, susu fermentasi, tape ubi kayu, ubi kayu rebus, larutan NaOH 0,1 N, larutan phenolftalein ( PP ) 1% .

3.2.      Metode

3.2.1.   Pencernaan Karbohidrat

3.2.1.1. Pengumpulan saliva,metode yang digunakan dalam pengumpulan saliva yaitu berkumur dengan air bersih dan mengambil kira-kira 20 ml 0,1 % NaCl dan memasukannya ke dalam mulut.  Berkumur paling sedikit selama satu menit lalu menampung air kumuran tersebut ke dalam gelas piala lalu menyaringnya untuk menghilangkan sel-sel epitel rongga mulut dan kotoran- kotoran lainnya.

 

3.2.1.2. Percobaan daya amilolitis saliva, metode yang digunakan dalam percobaan daya amilolitis saliva yaitumengambil empat tabung reaksi dan memberi nomor pada masing-masing tabung.Mengisi tabung pertama dengan 5 ml saliva dan menambahkan larutan amilum 1 % yang telah dimasak.Kemudian mengisi tabung kedua dengan 5mlsaliva yang telah didihkah, lalu mendinginkannya dengan air dan menambahkan 5 ml larutan amilum 1 % masak.  Selanjutnya mengisi tabung ketiga dengan 5 ml saliva, mengasamkannya dengan 5 tetes larutan HCl 0,1 N kemudian menambahkan dengan 5 ml larutan amilum 1 % masak. Dan yang terakhir mengisi tabung keempat dengan 5 ml larutan amilum1 % masak (tanpa menambah saliva).  Setelah semua siap kemudian memasukkan keempat tabung reaksi tersebut ke dalam inkubator yang bersuhu 370 C, dan mengamatinya setiap 15 menit sampai 15 menit ketiga, mengambil 1 tetes dan memasukannya ke tabung reaksi lalu melakukan uji Iod.

 

3.2.1.3.Pencernaan amilum masak oleh ekstrak pankreas, metode yang digunakan dalam pecernaan amilum masak oleh ekstrak pankreas yaitu mengambil 3 buah tabung reaksi, masing–masing tabung diberi nomor lima, enam, dan tujuh.  Kemudian mengisi tabung kelima dengan 5 ml amilum 1 % masak dan menambahkan 1 ml ekstrak pancreas.  Setelah itu mengisi tabung keenam dengan 5 ml amilum 1 % masak, menambahkan 1 ml ekstrak pankreas dan 5 tetes HCl 0,1 N.  Selanjutnya mengisi tabung ke tujuh dengan 5 ml amilum 1 % masak, menambahkan 5 tetes NaOH 0,1 N.  Setelah semua siap kemudian meletakkan ketiga tabung reaksi terseut dalam inkubator yang bersuhu 370 lalu mengikuti hidrolisisnya dengan uji Iod tiap 15 menit sampai 15 menit ketiga.

3.2.1.4. Pencernaan amilum masak oleh asam, metode yang digunakan dalam pecernaan amilum masak oleh asam  yaitu  mengambil dua buah tabung reaksi, memberi nomor tabung delapan dan sembilan.  Mengisi tabung ke delapan dengan 1 ml larutan HCl 0,1 N dan 5 ml larutan amilum masak, lalu memasukan ke dalam inkubator bersuhu 370. Mengisi tabung ke sembilan dengan 1 ml larutan HCL 0,1 N dan menambahkan larutan amilum masak. Tabung ke sembilan ini tidak dimasukkan ke dalam inkubator. Mengikuti hidrolisisnya tiap 15 menit dengan uji Iod.

 

3.2.2.   Pencernaan Protein

3.2.2.1.Pencernaan protein oleh pepsin, metode yang digunakan dalam pecernaan protein oleh pepsin yaitu mengambil 3 buah tabung reaksi dan mengisi masing-masing tabung tersebut dengan 1 ml larutan pepsin. Tabung yang pertama ditambahkan 1 ml larutan HCl 0,45% dan potongan gumpalan putih telur rebus, tabung yang kedua ditambahkan 1ml air dan potongan gumpalan putih telur , tabung yang ketiga larutan pepsin dididihkan terlebih dahulu, setelah dingin ditambahkan larutan HCl 0,45% dan ditambah potongan putih telur.Masukkan ketiga tabung reaksi ke dalam inkubator yang bersuhu 37 .Mengamati dengan cermat perubahan yang terjadi setiap 30 menit sampai 30 menit kedua.Pencernaan protein putih telur terlihat dengan hancurnya potongan putih telur (biasanya terlihat keruh).

 

3.2.2.2. Pencernaan protein oleh ekstrak pankreas, metode yang digunakan dalam pecernaan protein oleh ekstrak pankreas yaitumengambil tiga buah tabung reaksi dan masing-masing tabung diisi dengan 2ml ekstrak pankreas. Tabung yang pertama ditambahkan 1 ml larutan HCl 0,1 N dan potongan putih gumpalan telur, tabung kedua ditambahkan 1 ml larutan NaOH 0,1 N dan potongan gumpalan putih telur, tabung ketiga ekstrak pankreas didihkan terlebih dahulu, setelah dingin ditambahkan 1 ml larutan HCl 0,1 N dan potongan gumpalan putih telur.Memasukkan tabung reaksi kedalam incubator yang bersuhu 370C selama 30 menit hingga 30 menit kedua, kemudian mengamati kejadian yang terjadi.

 

3.2.3.   Pencernaan lemak

Metode dalam pencernaan lemak oleh ekstrak pankreas adalah dengan mengambil tiga tabung reaksi dan memberi label pada masing-masing tabung, dan mengisinya. Mengisikan dengan 2 ml minyak goreng dan 1 ml ekstrak pankreas pada tabung 1. Mengisikan dengan 2 ml minyak goreng, 1 ml ekstrak pankreas dan 3 tetes cairan empedu pada tabung 2,selanjutnya mengisikan dengan 2 ml minyak goreng dan 1 ml air pada tabung 3. Masukkan ketiga tabung reaksi tersebut ke dalam inkubator yang bersuhu 37 , kemudian menambahkan 5 tetes larutan fenolftalein (PP) 1% pada masing-masing tabung. Selanjutnya meneteskan dengan NaOH 0,1 N untuk masing-masing tabung sampai warna larutan berubah menjadi merah muda. Pencernaan lemak terjadi apabila lemak dihidrolisis menjadi asam lemak dan gliserol, semakin banyak asam lemak yang dibebaskan semakin banyak larutan NaOH yang dibutuhkan untuk menetralisir larutan tersebut.

 

3.2.4.   Penentuan Kadar Asam Total

3.2.4.1. Penentuan kadar asam laktat, metode yang digunakan dalam penentuan kadar asam total dengan kadar asam laktat yaitu memasukkan 10 ml susu segar kedalam gelas erlenmeyer dan kemudian menamambah 3 tetes larutan fenolftalein(PP) 1%, selanjutnya menitrasi dengan larutan NaOH 0,1 N sampai titik akhir titrasi berwarna merah muda. Kemudian mengulangi titrasi tersebut sampai 2 kali (duplo) dan mencatat volume NaOH rata-rata yang dibutuhkan.

 

3.2.4.2. Penentuan kadar asam asetat, metode yang digunakan dalam penentuan kadar asam total dengan kadar asam asetat yaitumenimbang dengan tepat 25 gr tape ubi kayu kemudian memasukkan ke dalam labu ukur 250 ml dan menambahkan air sampai tanda tertera serta menghomogenkan dengan menggunakan pengaduk magnetik. Saring dengan menggunakan kertas saring dan mengumpulkan filtratnya. Kemudian memasukkan 10 ml filtrat ke dalam gelas erlenmeyer dan menambahkan 3 tetes larutan fenolftalein (PP) 1%. Titrasi dengan menggunakan larutan NaOH 0,1 N sampai titik akhir titrasi berwarna merah muda. Ulangi titrasi tersebut sampai 2 kali (duplo) kemudian mencatat volume larutan NaOH rata-rata yang dibutuhkan.


BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1.      Karbohidrat  

4.1.1.   Percobaan Pencernaan Daya Amilolitis Saliva

            Berdasarkan hasil praktikum yang telah dilaksanakan mengenai pencernaan karbohidrat dan lemak diperoleh data sebagai berikut :

 

Tabel 1. Pencernaan Daya Amilolitas Saliva

Tabung

Waktu

Reaksi

(+/-)

Keterangan

15’

30’

45’

 

1

Kuning

Kuning

Kuning

 

+

Terjadi pencernaan

2

Kuning

Kuning

Kuning

 

+

Terjadi pencernaan

3

Kuning

Kuning

Kuning

 

+

Terjadi percernaan

4

Orange

Orange

Orange

 

+

Terjadi pencernaan

Sumber: Data Primer Praktikum Biokimia Dasar, 2012.

            Berdasarkan hasil pengamatan, didapatkan hasil perubahan warna yang sama dan reaksi yang sama pada 15 menit pertama hingga 15 menit ketiga. Percobaan daya amilolitis dihasilkan pada tabung pertama sampai tabung keempat terjadi perubahan warna setelah diteteskan larutan iod yaitu pada tabung 1, 2, dan 3 berwarna  kuning dan tabung 4 berwarna orange. Hal tersebut menunjukan sampel bereaksi positif, hal ini terjadi karena adanya amilum pada kelenjar saliva karena didalam saliva terdapat enzim ptialin yang berfungsi untuk menghidrolisis atau mencerna pati menjadi dekstrin dan maltosa. Hal ini sesuai dengan pendapatTillman, et al. (1991) yang menyatakan bahwa dekstrin merupakan hasil intermediate dari hidrolisa pati dan glikogen menjadi maltosa, dekstrin adalah produk atau hasil transisi yang beberapa diantaranya berwarna merah dengan tritrasi iodium berbeda dengan pati yang memberi warna biru. Pendapat ini diperjelas oleh Sumardjo (2009)bahwa di dalam usus proses pencernaan pati akan dilanjutkan oleh getah pankreas dan getah usus yang mengandung enzim-enzim amilase yang dapat menghidrolisis pati atau dekstrin atau maltosa menjadi glukosa.

 

4.1.2.   Percernaan Amilum Masak oleh Ekstrak Pankreas

Berdasarkan percobaan Pencernaan Amilum Masak oleh Ekstrak Pankreas didapatkan hasil :

Tabel 2. Pencernaan Amilum Masak oleh Ekstrak Pankreas

Tabung

Waktu

Reaksi

Keterangan

15’

30’

45’

 

5

Orange

Orange

Orange

 

+

Terjadi pencernaan

6

Orange

Orange

Orange

 

+

Terjadi pencernaan

7

Orange

Orange

Orange

 

+

Terjadi pencernaan

Sumber: Data Primer Praktikum Biokimia Dasar, 2012.

            Berdasarkan hasil pengamatan, tabung ke lima, enam,dan tujuh adalah percobaan pencernaan amilum masak oleh ekstrak pankreas dihasilkan berwarna orange dengan warna awal jernih sebelum diteteskan larutan iod dan dimasukkan kedalam inkubator 37 dan bereaksi positif, hal ini terjadi karena adanya pankreatik amilase yang terhidrolisis didalam usus halus. Pernyataan ini sesuaidengan pendapat Lehninger (1982) bahwa proses pengurain pati, glikogen dan polisakarida lain menghasilkan D-glukosa berlangsung terus disempurnakan didalam usus halus, sebagian besar oleh kerja pankreatik amilase, dibuat oleh pankreas dan disekresi melalui saluran pankretik kebagian atas.

 

4.1.3.      Pencernaan Amilum Masak oleh Asam

Berdasarkan percobaan Pencernaan Amilum Masak oleh Asam didapatkan hasil:

 

Tabel 3. Pencernaaan Amilum Masak oleh Asam

Tabung

Waktu

Reaksi

Keterangan

15’

30’

45’

 

8

Ungu

Ungu

Ungu

 

-

Tidak terjadi pencernaan

9

Ungu

Ungu

Ungu

 

-

Tidak terjadi pencernaan

Sumber: Data Primer Praktikum Biokimia Dasar, 2012.

            Berdasarkan hasil pengamatan, tabung  delapan dan sembilan adalah percobaan pencernaan amilum masak oleh asam dihasilkan berwarna ungu dengan warna awal jernih sebelum diteteskan larutan iod dan dimasukkan kedalam inkubator 37 dan bereaksi negatif, hal ini terjadi karena zat ptialin tidak dapat bekerja secara optimal pada pH asam. Pernyataan ini sesuai dengan pendapat  Poedjiadi dan Supriyanti (2006) bahwa enzim ptialin bekerja secara optimal pada pH 6,6. Enzim ptialin mulai tidak aktif pada pH 4,0 karena setelah makanan ditelan dan masuk kedalam lambung, proses hidrolisis oleh enzimptialin tidak berjalan lebih lama lagi.

 

 

4.2.      Protein

4.2.1.   Percobaan Pencernaan Protein oleh Pepsin

            Berdasarkan hasil praktikum yang telah dilaksanakan mengenai pencernaan protein diperoleh data sebagai berikut :

Tabel 4. Pencernaan Protein oleh Pepsin

Tabung

Keadaan Putih Telur

Reeaksi

(+/-)

30 Menit Pertama

30 Menit Kedua

1

Utuh jernih

Rusak keruh

+

2

Utuh jernih

Utuh jernih

-

3

Rusak keruh

Rusak keruh

+

Sumber: Data Primer Praktikum Biokimia Dasar, 2012.

Berdasarkan hasil praktikum, pada tabung yang pertama yaitu larutan pepsin yang ditambah dengan HCl dan putih telur yang setelah dimasukkan kedalam inkubator akan mengalami rusak dan keruh inidikarenakan pepsin dapat bekerja dalam suasana asam. Hal ini sesuai dengan pendapatHawab (2004) bahwa pencernaan protein oleh pepsin bekerja dalam suasana asam, apabila berada dalam suasana basa dan pemanasan akan rusak. Ditambahkan oleh pendapat Poedjiadi dan Supriyanti, (2006) yang menyatakan bahwa enzim mempunyai aktifitas biokimiawi sebagai katalis dalam tubuh, oleh perubahan suhu atau pH, aktifitas enzim akan mengalami perubahan, karena itu tiap enzim mempunyai pH dan suhu tertentu yang menyebabkan aktifitas mencapai keadaan optimum.

Tabung kedua larutan pepsin ditambah dengan air dan putih telur yang setelah dimasukan kedalam inkubator, utuh dan jernih ini dikarenakan pepsin tidak dapat bekerja apabila tidak dalam suasana asam, tetapi pada tabung reaksi terlihat keruh dan ini menunjukkan bahwa pepsin dapat bekerja dalam kondisi dipanaskan sehingga putih telur tersebut telah tejadi denaturasi adanya kerusakan oleh putih telur akibat pemanasan.Hal ini sesuai dengan pendapat Poedjiadi dan Supriyanti (2006) yang menyatakan bahwa pH rendah atau pH tinggi dapat menyebabkan terjadinya proses denaturasi dan akan menyebabkan menurunnya aktifitas enzim.

Tabungketiga larutan pepsin dididihkan, setelah dingin ditambah dengan HCl dan putih telur, yang setelah dimasukan kedalam inkubator akan terjadi kerusakan dan keruh ini dikarenakan pepsin akan mengalami kerusakan apabila ada proses pemanasan, namun karena ditambah dengan HCl maka akan terjadi kerusakan yang ditandai dengan terbetuknya gumpalan putih telur. Hal ini sesuai dengan pendapat Martoharsono (2006) yang menyatakan bahwa pada pH dan suhu yang tinggi maka protein globular mengalami perubahan fisik yang dinamakan denaturasi, salah satu sifat yang tampak adalah kelarutannya yang menurun.Pendapat ini ditambahkan oleh Kusnandar (2010) bahwaprotein dapat mengalami denaturasi oleh adanya penambahan asam yang menyebabkan perubahan pH yang ekstrim, pengaruh pelarut organik (seperti alkohol dan aseton) dan penambahan garam (CaSO4).

 

 

 

 

 

 

4.2.2.   Percobaan Pencernaan Protein oleh Ekstrak Pankreas

Berdasarkan hasil praktikum yang telah dilaksanakan mengenai pencernaan protein diperoleh data sebagai berikut :

 

Tabel 5. Pencernaan Protein oleh Ekstrak Pankreas

Tabung

Keadaan Putih Telur

Reaksi

(+/-)

30 Menit Pertama

30 Menit Kedua

4

Rusak keruh

Rusak keruh

+

5

Rusak keruh

Rusak keruh

+

6

Rusak keruh

Rusak keruh

+

Sumber: Data Primer Praktikum Biokimia Dasar, 2012.

Berdasarkan hasil praktikum, pada tabung yang keempat ekstrak pankreas yang telah dilarutkan ditambah dengan larutan HCL dan potongangumpalan putih telur yang setelah dimasukan kedalam inkubator akan mengalami rusak dan keruh ini dikarenakanpankreas tidak dapat bekerja apabila dalam suasana asam yaitu ditambahkan HCl, tetapi enzim-enzim proteolitik bekerja baik apabila dalam suasana basa. Tabung keempat ini tidak terjadi pencernaan protein, tetapi pada data praktikum reaksi menunjukkan positif hal ini dikarenakan terjadi kesalahan prosedur yang menyebabkan reaksi menjadi positif. Hal ini sesuai dengan pendapatHawab (2004) bahwa pencernaan protein oleh ekstrak pankreas paling baik bekerja dalam suasana basa. Bila dipanaskan enzim tersebut mengalami kerusakan.

Tabung kelima ekstrak pankreas yang telah dilarutkan dan ditambahkan dengan larutan NaOH 0,1Ndan potongangumpalan putih telur yang setelah dimasukan kedalam inkubator akan mengalami rusak dan keruh ini dikarenakan ekstrak pankreas dapat bekerja dengan baik dalam suasana basa dan potongan putih telur akan terhidrolisis secara sempurna oleh ekstrak pankreas. Pendapat ini ditambahkan olehHawab (2004) bahwa pencernaan protein oleh ekstrak pankreas paling baik bekerja dalam suasana basa. Enzim tersebut apabila dipanaskan akan mengalami kerusakan.

Tabung keenam ekstrak pankreas yang dididihkan, setelah dingin ditambahkan dengan larutan NaOH 0,1Ndan potongangumpalan putih telur yang setelah dimasukan kedalam inkubator akan mengalami rusak dan keruh ini dikarenakan terjadinya proses pencernaan protein. Terjadinya pencernaan ini dikarenakan adanya faktor teknis, kemungkinan alat yang digunakan kurang mendukung, karena enzim akan rusak oleh temperatur yang panas akibat dididihkan.Hal ini sesuai dengan pendapat Riswiyanto (2003) yang menyatakan bahwa koagulasi dari putih telur oleh pemanasan merupakan contoh denaturasi dari protein albumin.Pendapat ini diperjelas oleh Kusnandar (2011) bahwa protein enzim yang dipanaskan pada suhu tertentu akan hilang sifat kelarutan dan aktivitas enzimatisnya. Perlakuan pemanasan sering dilakukan dalam proses pengolahan pangan untuk menginaktivasi enzim dengan cara denaturasi protein.

 

 

4.3.      Lemak

            Berdasarkan hasil praktikum yang telah dilaksanakan mengenai pencernaan lemak diperoleh data sebagai berikut :

 

Tabel 6. Hasil Pencernaan Lemak oleh Ekstrak Pankreas

 

Jumlah NaOH (tetes)

Tabung 1

8 tetes

Tabung 2

11 tetes

Tabung 3

2 tetes

Sumber: Data Primer Praktikum Biokimia Dasar, 2012.

Tabung pertama membutuhkan 8 tetes NaOH karena cairan pankreas mengandung natrium bikarbonat yang bersifat basa dan dapat menetralisir dalam proses pencernaan lemak. Lemak terhidrolisis oleh enzin lipase yang terdapat pada cairan pankreas dan terjadi pada usus halus. Hal ini sesuai dengan pendapat                                         Sumardjo (2009) yang menyatakan bahwa asam-asam lemak netral memiliki rantai karbon yang panjang dan tidak larut dalam air, tetapi larut dalam pelarut lemak. Pelarut lemak yang baik yaitu benzena, kloroform dan dietil eter. Pendapat diatas diperjelas oleh Winarno (1986) bahwa steapsin (lipase) dalam duodenum yang berfungsi mencerna lemak menjadi asam lemak dan gliserol.

Tabung kedua membutuhkan 11 tetes NaOH karena cairan empedu berperan sebagai  emulsifier lemak, sehingga menjadi suspensi dalam air. Enzim-enzim kemudian memecah suspensi lemak tersebut menjadi komponen-komponennya. Hal ini sesuai dengan pendapat Lehninger (1982) yang menyatakan garam-garam empedu sangat penting di dalam penyerapan tidak hanya bagi zat-zat triasilgliserol tetapi juga bagi semua makanan dan lemak yang dapat larut. Pendapat diatas diperjelas oleh Poedjiadi dan Supriyanti (2006) yang menyatakan garam empedu merupakan komponen utama dalam empedu, dan berfungsi sebagai emulgator yaitu suatu zat yang menyebabkan kestabilan suatu emulsi.

Tabung ketiga membutuhkan 2 tetes NaOH karena lemak tidak dicerna oleh air.Hal ini sesuai dengan pendapat Lehninger (1982) bahwa asam  lemak  yang umum dijumpai bersifat tidak larut dalam air tetapi dapat dispresi menjadi misel didalam NaOH encer yang mengubah asam lemak menjadi sabun mempunyai sifat tidak larut dalam air, karena asam lemak tidak terhidrolisis maka hanya sedikit NaOH yang dibutuhkan yaitu 2 tetes. Semakin banyak larutan NaOH yang dibutuhkan untuk menetralisir, semakin banyak pula asam lemak yang di bebaskan. Pendapat diatas diperjelas oleh Poedjiadi dan Supriyanti (2006) bahwa pada rantai hidrokarbon bersifat hidrofob artinya tidak suka air atau tidak mudah larut dalam air.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

4.4.      Penentuan Kadar Asam Total

Berdasarkan hasil praktikum yang telah dilaksanakan mengenai pencernaan protein diperoleh data sebagai berikut :

 

Tabel 7. Hasil Percobaan Kadar Asam Laktat Susu Segar

 

Jumlah NaOH (ml)

Titrasi I

2,1

Titrasi II

2

Titrasi III

 

Rata-rata

2,05

Sumber: Data Primer Praktikum Biokimia Dasar, 2012.

Berdasarkan hasil praktikum mendapatkan hasil rata-rata titrasi kadar asam laktat pada susu segar sebesar 2,05 ml dan mendapatkan kadar asam laktat sebesar 0,31% dan melebih standar yaitu 0,15%. Hal ini sesuai dengan pendapat Legowo, et al (2009) yang menyatakan bahwa nilai ke asaman menunjukkan banyaknya jumlah asam yang ada dalam susu dan sering dinyatakan sebagai total asam atau keasaman tertitrasi (titratable acidity).Nilai keasaman susu normal adalah berkisar antara 13-20 mmol perliter. Nilai ini setara dengan total asam (dihitung sebagai asam laktat) sebesar 0,135-0,175% dengan nlai rata-rata 0,15%. Hal ini ditambahkan oleh pendapat Soeparno, et al (2011) yang menyatakan bahwa penentuan persen keasaman setara asam laktat didasarkan oleh kerusakan mikrobiologik sehingga menyebabkan susu, menjadiasam. Keasaman susu segar sekitar 0,18-0,24% dihitung sebagai persen setara asam laktat.

 

 

Tabel 8. Hasil Percobaan Kadar Asam Laktat Yoghurt Plan

 

Jumlah NaOH (ml)

Titrasi I

6,7

Titrasi II

8

Titrasi III

 

Rata-rata

7,35

Sumber: Data Primer Praktikum Biokimia Dasar, 2012.

            Berdasarkan hasil praktikum, hasil rata-rata titrasi yaitu 7,35 dan kadar asam laktat yaitu 1,14%. Hasil ini baik, karena tidak jauh dengan standar asam laktat pada yoghurt. Hal ini sesuai dengan pendapat Legowo, et al (2009) yang menyatakan bahwa pembuatan yoghurt setelah inokulasi, melakukan proses inkubasi selama 6-12 jam. Selesainya inkubasi akan diperoleh produk yoghurt yang ditandai dengan susu menjadi kental dan beraroma asam. Yoghurt normal biasanya mempunyai keasaman sekitar 0,9-1,0%.Pendapat diatas ditambahkan oleh Hidayat et al (2006) bahwa asam laktat diperoleh melalui fermentasi dengan bantuan bakteri.

Tabel 9. Hasil Percobaan Kadar Asam Asetat Tape

 

Jumlah NaOH (ml)

Titrasi I

0,3

Titrasi II

0,3

Titrasi III

 

Rata-rata

0,3

Sumber: Data Primer Praktikum Biokimia Dasar, 2012.

            Berdasarkan hasil praktikum, rata- rata titrasi yang diperoleh yaitu 0,3 dan kadar asam asetat pada tape yaitu 0,12%.Ubi kayu ataupun sumber karbohidrat lainnya dapat difermentasikan oleh mikrobia amilolitik menjadi tape. Hal ini terjadi dari ubi kayu yang telah dikukus dan difermentasikan oleh mikroba amiliolotik menjadi tape. Mikroba tersebut menghasilkan enzim amiliolotik yang dapat memecah pati menjadi dekskrin, maltotrosa, maltosa, dan glukosa dan melalui jalur glikolisis yang mengeluarkan hasil samping berupa alkohol.  Bantuan enzim, alkohol dapat mengeluarkan hasil samping berupa asam asetat. Hal ini sesuai dengan pendapatHidayat, et.al (2006) bahwa pada fermentasi tape terjadi perubahan biokimia yaitu perubahan pati menjadi glukosa dan maltosa, serta perubahan gula menjadi alkohol dan asam organik. Sumardjo (2009) menambahkan bahwa mikrobia amilolitik (pemecah karbohidrat atau pati) mampu menghasikan enzim amilase atau amilolitik yang dapat memecah pati menjadi dekstrin, maltosa, maltriosa dan glukosa. Glukosa dimanfaatkan oleh mikrobia untuk pertumbuhan dengan mengeluarkan hasil sampingan berupa alkohol. Alkohol dapat dimanfaatkan lebih lanjut oleh bakteri pembentuk asam asetat untuk pertumbuhan dengan mengeluarkan hasil sampingan berupa asam asetat.

 

Tabel 10. Hasil Percobaan Kadar Asam Asetat Ubi Kayu Rebus

 

Jumlah NaOH (ml)

Titrasi I

0,3

Titrasi II

0,4

Titrasi III

 

Rata-rata

0,35

Sumber: Data Primer Praktikum Biokimia Dasar, 2012.

Berdasarkan hasil praktikum, rata-rata titrasi percobaan kadar asam asetat ubi kayu rebus adalah 0,35 dan kadar asam asetat adalah 0,14%, dikarenakan pada ubi kayu rebus sendiri memiliki kandungan asam yang sedikit. Ubi kayu mengandung karbohidrat dimana zat ini memiliki potensi berubah menjadi asam asetat.Hasil ini mendapatkan rasa yang manis. Hal ini sesuai denagan pendapat Hidayat, et.al (2006) bahwa hidrolisis pati menjadi glukosa dan maltosa yang akan memberikan rasa manis serta perubahan gula menjadi alkohol dan asam organik. Pendapat diatas ditambahkan oleh Sumardjo (2009) menambahkanbahwa mikrobia amilolitik (pemecah karbohidrat atau pati) mampu menghasikan enzim amilase atau amilolitik yang dapat memecah pati menjadi dekstrin, maltosa, maltriosa dan glukosa. Glukosa dimanfaatkan oleh mikrobia untuk pertumbuhan dengan mengeluarkan hasil sampingan berupa alkohol. Alkohol dapat dimanfaatkan lebih lanjut oleh bakteri pembentuk asam asetat untuk pertumbuhan dengan mengeluarkan hasil sampingan berupa asam asetat.

 

BAB V

SIMPULAN DAN SARAN

5.1.      Simpulan

Karbohidrat atau sakarida adalah polihidroksi aldehida atau polihidroksi keton, yang pada umumnya mempunyai rumus umum Cn(H2O)n.Enzim ptialin bekerja pada keadaan basa dan pada suhu 30 – 37 , jika di atas atau di bawahnya enzim tidak bekerja sehingga pencernaan terhambat.Protein tidak terhidrolisis atau sukar larut dalam air dan enzim pepsin tidak bekerja secara maksimal apabila pada suhu yang tidak optimal. Proses pencernaan protein yang ditandai dengan rusaknya putih telur dan enzim pepsin dapat bekerja pada suhu yang optimal. Lipase yang disekresikan oleh getah lambung dan asam lambung yang berfungsi mencerna lemak menjadi asam lemak gliserol.Pembentukan asam laktat pada susu dan pembentukan asam asetat pada tape terjadi karena proses fermentasi. Kadar asam laktat pada yoghurt lebih besar daripada kadar asam laktat pada susu segar. Semakin banyak bakteri asam laktatnya maka semakin besar persentase kadar asam laktat pada susu tersebut.

 

5.2.      Saran

            Kegiatan praktikum diharapkan agar dapat saling bekerja sama dengan para anggotanya dan asistennya, sehingga praktikum dapat berjalan sesuai dengan jadwal yang ada.

 

DAFTAR PUSTAKA

Budiyanto, M. A. K., 2003. Mikrobiologi Terapan. Jawa Timur. Universitas Muhammadiyah Malang.

Hart, H., Craine, L., Hart, D. C. 2003. Kimia Organik. Erlangga. Jakarta. (diterjemahkan oleh Suminar Setiati Achmadi).

 

Hawab, H. M. 2004. Pengantar Biokimia. Malang. Banyumedia Publishing.

Hidayat, N., Padaga, M. C. Dan uhartini, S.,2006. Mikrobiologi Industri. Yogyakarta. CV. Andi Offset.

Kuchel, P., dan Gregory, G. B. 2006. Biokimia. Jakarta. Erlangga.

Kusnandar, F. 2010. Kimia Pangan Komponen Makro. Jakarta. PT Dian Karya.

Legowo, A. M., Kusrahayu., dan Sri, M. 2009. Ilmu Teknologi Susu.Jawa Tengah. BP Undip Semarang.

Lehninger, A. L., 1982. Dasar-Dasar Biokimia Jilid 1. Jakarta. Erlanggga. (diterjemahkan oleh Maggy Thenawidjaja)

Martoharsono, S. 2006. Biokimia 1. Yoyakarta. Gadjah Mada University Press.

 

Poedjiadi, A. dan Supriyanti. 2006. Dasar-Dasar Biokimia. Jakarta. Penerbit Universitas Indonesia.

 

Sumardjo, D. 2009. Pengantar Kimia. Jakarta. Penerbit Buku Kedokteran EGT.

Soeparno., Rihastuti, R. A., Indratiningsih., dan Suharjono, T. 2011. Dasar Teknologi Hasil Ternak. Yogyakarta. Gajah Mada Universitas Press.

Tillman, A. D., Hartadi, H. Reksohadiprojo, S., Prawirokusumo, S., Lebdosoekojo, S. 1991. Ilmu Makanan Ternak Dasar. Yogyakarta. Gajah Mada University Press.

Riswiyanto. 2003. Kimia Organik. Erlangga. Jakarta.

Winarno, F.G. 1986. Enzim Pangan dan Gizi. Jakarta. Gramedia.

 

 


LAMPIRAN

Lampiran 1.   Gambar Alat dan Fungsi

1

2

Pipet Tetes

Tabung Reaksi

Untuk mengambil larutan

Tempat untuk Mereaksikan Larutan

3

4

Rak Tabung

Mortal

Tempat meletakan tabung

 Tempat menghaluskan bahan yang akan diujikan

5

6

 

Gelas Ukur

Pisau

Mengukur banyaknya larutan yang akan diujikan

Tempat untuk Mereaksikan Larutan

7

8

 

Lampu Bunsen

Penjepit

Memanaskan bahan yang diujikan

Menjepit tabung reaksi ketika dipanaskan

Lanjutan (Lampiran 1. Alat dan Fungsi)

9

 

10

Inkubator

Gelas Elenmeyer

Memanaskan bahan yang diujikan agar panasnya sesuai dengan suhu tubuh

Tempat susu dan tape yang akan dititrasi

11

 

12

 

Labu Ukur

Pengduk Magnetik

Tempat mencapur tape dan ubi kukus dengan air

Menghomogenkan tape dengan air

13

 

14

 

Pipet Hisap

Penghisap

sebagai wadah larutan yang dihisap.

menghisap sampel larutan yang akan diuji.

15

 

 

Timbangan analitik

digunakan untuk menimbang bahan-bahan yang digunakan pada praktikum.

 

Lampiran 2.   Pertanyaan Karbohidrat dan Lemak

2.1.      Pertanyaan Karbohidrat

  1. Berilah contoh untuk masing-masing monosakarida (pentosa dan heksosa)

Jawab :

Contoh monosakarida :

a)      pentosa                  : ribosa, xilosa, arabinosa

b)      heksosa                  : glukosa, fruktosa, laktosa

  1. Berilah contoh disakarida pereduksi dan bukan pereduksi ?

Jawab :

Contoh disakarida pereduksi dan bukan pereduksi  :

a)      pereduksi               : maltosa, sellobisa, maltosa

b)      bukan pereduksi    : sakarosa dan threhalosa

  1. Apa yang dimaksud dengan oligosakarida dan berilah contoh oligosakarida ?

Jawab :

Oligosakarida yaitu karbohidrat yang tersusun atas 2 molekul sampai 10 molekul monosakarida. Contoh oligosakarida  :

a)      disakarida              : maltosa, sellobisa,laktosa

b)      trisakarida             : robinosa, sakarosa, gentibiosa

c)      tetrasakarida          : skorodosa, stachiosa

  1. Berilah contoh masing-masing polisakarida (pentosa dan heksosa) ?

Jawab :

Contoh polisakarida:

Lanjutan (Lampiran 2. Pertanyaan Karbohidrat dan Lemak)

a)      pentosa                  : xylan dan araban

b)      heksosan                : glukosan, fruktosan, mannan, galaktosan

  1. Apa yang dimaksud dengan uji benedict positif dan uji benedict negatif?

Jawab :

            Uji benedict positif           : jika pada akhir raksi terbentuk endapan merah bata.

            Uji benedict negatif          : jika pada akhir reasi tidak terbentuk endapan merah bata.

  1. Selain dengan uji benedict hidrolisis karbohidrat dapat diuji dengan menggunakan apa saja dan bagaimana hasilnya?

Jawab :

Uji untuk mengidentifikasi karbohidrat selain uji benedict :

a)      uji molish               :  positif jika terbentuk larutan berwarna ungu

b)      uji anthrone           :  positif jika terbentuk larutan berwarna hijau

c)      uji asam pikrat       :  positif jika terbentuk larutan berwarna merah

d)     uji seliwanorf        :  positif jika terbentuk larutan berwarna merah

e)      uji fehling              :  positif jika terbentuk endapan merah bata

f)       uji tollens               :  positif jika terbentuk cincin perak pada tabung

  1. Berdasarkan hasil percobaan pencernaan karbohidrat diatas (tabung 1 s.d tabung 9) kesimpulan apa yang dapat anda tarik ?

Jawab :

 

Lanjutan (Lampiran 2. Pertanyaan Karbohidrat dan Lemak)

Kesimpulan yang dapat diambilenzim-enzim dalam tubuh dapat mencerna atau menghidrolisis karbohidrat ( pati atau amilum) menjadi dekstrin dan maltosa. Enzim-enzim tersebut dapat bekerja pada kondisi asam dan basa. Pada rongga mulut ( kondisi basa ) enzim ptialin atau amilase saliva aktif pada PH 6,8 dan tidak aktif pada PH <4,0. Selanjutnya di dalam lambung ( kondisi asam) dan usus akan dilanjutkan oleh getah pankreas, asam lambung dan getah usus yang mengandung enzim-enzim amilase yang dapat menghidrolisis pati atau dekstrin/ maltosa.

 

2.2.    Pertanyaan Lemak

  1. Tuliskan rumus umum lemak sederhana ( trigliserida ) !

      Jawab :                              O

                        H2C      O         C        R1

                                                O

                        H2C      O         C        R2

                                                 O

                        H2C      O         C        R3

  1. Berdasarkan percobaan diatas  mana yang pencernaan lemaknya terbaik dan        Jawab :

 

 

Lanjutan (Lampiran 2. Pertanyaan Karbohidrat dan Lemak)

Pencernaan lemak paling bagus adalah pada tabung no 2, karena pada tabung menggunakan ekstrak pankreas, sehingga banyak terdapat NaOH untuk menetralisirnya.

  1. Bagaimana reaksi biokimia perubahan lemak ( trigliserida ) menjadi asam lemak dan gliserol ?

 

Jawab :

                O

H2C   O   C   R1

            O                                                                                 H2C     CH      CH2

H2C   O    C   R2                                            CnH2n+1 – COOH +

                 O                                     asam lemak                        OH    OH      OH

H2C   O    C    R3                                                                                 gliserol

 

Lampiran 3. Pertanyaan Protein dan Asam Total

3.1.        Pertanyaan Protein

  1. Sebutkan asam-asam amino penyusun protein ?

            Jawab :  Asam amino penyusun protein yaitu:  Alanin, Valin, Leusin,          Isoleusin, Phenilalanin, Triptophan, Methionon, Prolin, Asam aspartat,          Asam glutamat, Glisin, Serin, Threonin, Sistein, Tirosin, Aspargin,         Glutamin, Lisin, Arginin dan Histidin.

  1. sebutkan asam-asam amino yang mengandung unsur S, dan bagaimana rumus bangunnya ?

            Jawab :  Asam amino yang mengandung unsur S adalah Sistein dan            Methionin.

Rumus bangun:

                                                COO-

 

 

HS       CH2     CH

                       

                                                NH3+

            Sistein

COO-

                CH– CH– CH2 – CH2 – S – CH3

                        NH3

                     Methionin

 

 

 

Lanjutan (Lampiran 3. Pertanyaan Protein dan Penentuan Kadar Asam Total)

 

1. Bagaimanakah reaksi ringkas perubahan glukosa menjadi alkohol?

jawab:

C6H12O6          2 ( CH3COCOOH )        2 ( CH3CHO ) + 2CO2      2(CH3CH2OH ) 

2.       Bagaimana perubahan reaksi secara lengkap dari laktosa menjadi asam laktat

          jawab:

laktosa        

                   CH2OH                                                  CH2OH

                                                                                                            OH

        HO      H                                                    H      H                   H

         H        OH                H      H        o                     OH              HO     H

                    H                 HO                                      H           

dihidrolisis                       CHO

                                    + GALAKTOSA        

      H        C              OH

   HO        C              H

      H        C              OH

      H        C              OH

                 CH2O

2 ( CH3COCOOH )laktat dihidrogenase    2 ( CH3CHOHCOOH )

                   2 asam laktat

Lanjutan (Lampiran 3. Pertanyaan Protein dan Penentuan Kadar Asam Total)

 

3.       Dari percobaan kadar asam totl tersebut diatas, kesimpulan apa yang anda peroleh?

          jawab:

Susu fermentasi mempunyai kandungan laktosa air susu sekitar 4,2-5%, proses fermentasi yang dilakukan oleh bakteri yang bersifat homofenmanentatif, laktosa hanya diubah menjadi asam laktat, sedangkan kelompok bakteri herterofermatif mengahsilkan asam asetat, alkohol, CO2, selain asam laktat. Tape sebagai produk makanan yang cepat rusak karena adanya fermentasi lanjut setelah kondisi optimum fermentasi tercapai. Perubahan biokimia yang penting pada fermentasi tape adalah hidrolisis pati menjadi glukosa dan maltosa yang akan memberikan rasa manis serta perubahan gula menjadi alkohol dan asam organik.

 

Lampiran 4. Perhitungan Kadar Asam Total

Perhitungan kadar asam laktat susu segar

Diketahui :         V1= 2,05 ml

                                     N= 0,17 ml

                                     V2= 10 ml

                                     B= 90

Ditanya:             L=…..?

Jawab:               

                                    = 0,31365 %

 

Perhitungan kadar asam laktat yoghurt plan

Diketahui:          V1= 7,35 ml

                                     N= 0,17 ml

                                     V2= 10 ml

                                     B= 90

Ditanya:             L=……….?

Jawab:               

                                    = 1, 12455%

Perhitungan kadar asam asetat tape

Diketahui:          V= 0,3

                                     N= 0,17

                                     P= 250/10= 25

                                     B= 60

                                     G= 259

Ditanya:             A=………..?

Jawab:               

                                    = 0,1224%

Perhitungan kadar asam asetat ubi kayu rebus

Diketahui:          V= 0,35

                                     N= 0,17

                                     P= 100/10 = 10

                                     B= 60

                                     G= 259

Ditanya:             A=………….?

Jawab:               

                                                = 0,1428%

 

 

Lampiran 5. Foto Copy Laporan Hasil Praktikum Sementara


 

Lanjutan (Lampiran 5. Foto Copy Laporan Hasil Praktikum Sementara)


 

Lanjutan (Lampiran 5. Foto Copy Laporan Hasil Praktikum Sementara)

 

 

Lanjutan (Lampiran 5. Foto Copy Laporan Hasil Praktikum Sementara)

 

 

Lanjutan (Lampiran 5. Foto Copy Laporan Hasil Praktikum Sementara)

 

 

Lanjutan (Lampiran 5. Foto Copy Laporan Hasil Praktikum Sementara)


 

Lampiran 6. Foto Copy Literatur

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)

 

 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)

 

 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)

 

 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)

 

 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)

 

 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)

 

 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)

 

 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)

 

 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)


 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)


 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)


 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)


 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)


 

Lanjutan (Lampiran 6. Foto Copy Literatur)

LAPORAN PRAKTIKUM FISIOLOGI TERNAK

29 Jun

LAPORAN PRAKTIKUM

FISIOLOGI TERNAK

 
   

 

 

 

 

 

 

Oleh :

 

Arif Nurrohman

23010111120050

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

JURUSAN S-1 PETERAKAN

FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN

UNIVERSITAS DIPONEGORO

SEMARANG

2012
LEMBAR PENGESAHAN

Judul                           : LAPORAN PRAKTIKUM FISIOLOGI TERNAK

Nama                           : ARIF NURROHMAN

NIM                            : 23010111120050

Kelompok                   : VIIIA (DELAPANA)

Jurusan                        : S1 – PETERNAKAN

Tanggal Pengesahan    :       Mei 2012

 

 

 

Menyetujui,

 

Koordinator Praktikum

 

 

 

 

Dr. Ir. Isroli, M.P.

NIP. 19580502  197603 1 002

Asisten Pendamping

 

 

 

 

Rodliyya Yudha Murti

NIM. 23010110130172

 

RINGKASAN

ARIF NURROHMAN. 23010111120050. 2012. Laporan Praktikum Fisiologi Ternak. (Asisten : RODLIYYA YUDHA MURTI).

 

Praktikum Fisiologi Ternak dilaksanakan pada tanggal 5 Mei 2012, pukul 13.00-15.00 dan 12 Mei 2012, pada pukul 07.00-09.00 WIB di Laboratorium Fisiologi dan Biokimia Ternak Fakultas Peternakan dan Pertanian Universitas Diponegoro. Praktikum Fisiologi Ternak bertujuan dapat melakukan pembuatan preparat apus darah, dapat menghitung jumlah eritrosit, dapat menghitung jumlah leukosit, dan bisa mengukur kadar hemoglobin pada darah ayam.

Materi yang digunakan dalam praktikum antara lain bahan yang digunakan adalah darah  ayam, metanol, pewarna giemsa, alkohol 70%, aquades, minyak emersi, larutan Hayem, larutan Turk, dan larutan HCl 0,1 N. Alat-alat yang digunakan adalah spuit 3 cc, gelas objek, pipet tetes, mikroskop, pipet tetes, bilik hitung Improved Neurbauer, hand counter, junetsky dan Hemometer Asistent dari Doppelfanbstab. Metode pada pembuatan preparat apus darah membersihkan dua kaca objek menggunakan alkohol 70%, mengambil satu tetes darah dan meneteskannya pada kaca objek. Pada perhitungan jumlah eritrosit dan leukosit yaitu dengan mengisap darah dengan pipet eritrosit dan leukosit, melepas karet pada pipet dan memutarkannya sampai tercampur, membuang cairan yang bukan darah, meneteskan pada kamar hitung Neubauer, mengamati di bawah mikroskop dengan perbesaran 40x, menghitung jumlah eritrosit dan leukosit pada bilik hitung Neubauer. Pada pengukuran kadar hemoglobin mengisikan 0,1N HCl pada tabung reaksi, menghisap darah dengan pipet hemoglobin, mengaduk dan menunggu 3 menit, memasukan tabung sahli ke dalam blok komparator, melakukan pengenceran aquades pada larutan darah, membaca tinggi permukaan cairan dalam tabung pengukur. Pada penetapan hematokrit yaitu, mengisi tabung mikrokapiler dengan darah, memasukan tabung kapiler ke dalam sentrifuse, memusingkan selama 5 menit, membaca nilai hematrokit dengan grafik khusus.  

      Hasil pembuatan preparat apus darah ayam adalah tardapat butiran-butiran darah yaitu eritrosit, hemoglobin, dan plasma darah. Pengukuran kadar hemoglobin darah ayam diperoleh rata-rata kadar hemoglobin sebesar 9,2 g/ml, pada pengamatan penetapan nilai hematokrit diperoleh rata-rata hasil nilai hematokrit sebesar 20%, perhitumgan jumlah eritrosit diketahui jumlah eritrositosit sebanyak 1.900.000 buah eritrosit dan pada perhitungan jumlah leukosit didapatkan jumlah leukositsit sebanyak 7.775 buah leukosit.

 

Kata kunci: apus darah, hemoglobin, hematokrit, eritrosit, dan leukosit

BAB I

HASIL DAN PEMBAHASAN

1.1.Apus Darah

Berikut ini adalah hasil pengamatan membuat preparat apus darah ayam:

 

   

                Perbesaran 40 x                                     Perbesaran 1000 x

Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2012.

Ilustrasi 1. Pengamatan Preparat Apus Darah Ayam

Keterangan :          1. Eritrosit

                        2. Plasma darah

                        3. Hemoglobin

Berdasarkan hasil pengamatan menggunakan mikroskop dengan perbesaran 40x dan 1000 x, dimana pada perbesaran 40 bagian eritrosit lebih terlihat dan lebih jelas. Hal ini sesuai dengan pendapat Subowo (2009) yang menyatakan bahwa dalam seiap 1 mm3 darah terdapat sekitar 5 juta eritrosit, oleh karena itu pada sediaan darah yang tampak paling menonjol adalah sel eritrosit. dimana pada perbesaran 1000 x ditambahkan minyak imersi, terlihat bagian dalam darah yaitu sel-sel darah yaitu eritrosit hemoglobin dan plasma darah. Plasma darah memiliki darah berwarna kuning, hal ini sesuai dengan pendapat yang dinyatakan oleh Pearce (1995) plasma darah adalah cairan berwarna kuning yang dalam alkali bersifat sedikit alkali dan ,memiliki fungsi sebagai medium untuk penyaluran makanan, mineral, minyak, glukose, dan asam amino ke jaringan dan juga meiliki fungsi sebagai medium untuk mengangkat bahan buangan seperti urea, asam urat, dan karbondioksida.

 

1.2.Pengukuran Kadar Hemoglobin

            Berdasarkan hasil pengamatan didapatkan hasil sebagai berikut :

  Tabel 1. Hasil pengamatan pengukuran kadar hemoglobin

Jenis Darah

Kadar Hemoglobin (g/ml)

Darah Ayam

9

Darah Ayam

9,4

Rata-rata

9,2

  Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2012.

Berdasarkan hasil praktikum diketahui bahwa pada praktikum penentuan kadar hemoglobin menunjukkan bahwa kadar hemoglobin darah ayam sebesar 9,2% Sahli. Kadar tersebut sesuai dengan pendapat Frandson (1992) yang menyatakan bahwa kadar Hb ayam normal adalah 8–13 % Sahli. Hasil pengamatan kadar Hb pada darah ayam tersebut menunjukkan bahwa kadar darah ayam berada pada kisaran normal, berarti ayam dalam keadaan sehat dan sedang tidak terjangkit suatu penyakit dan gangguan. Hal tersebut sesuai dengan pendapat Guyton (1989) bahwa jumlah dan persentase hemoglobin dalam sel terletak dalam kisaran normal saat sehat, dan tidak akan meningkat melampaui batasan tersebut kecuali terdapat gangguan metabolik tubuh. Apabila pembentukan hemoglobin dalam sum tulang berkurang, maka persentase hemoglobin dalam sel dapat turun sampai 15 gram persen atau kurang.

 

1.3.Penetapan Nilai Hematokrit

Berikut ini adalah hasil penetapan nilai hematokrit darah ayam:

Table 2. Penetapan Nilai Hematokrit

Jenis darah

Nilai Hematokrit (%)

Darah ayam

20 %

Darah ayam

20 %

Rata-rata

20 %

Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak 2012.

Berdasarkan hasil praktikum menunjukkan bahwa uji dilakukan sebelum menentukan nilai hematokrit dalam darah ayam mulai dari mengisi tabung hematokrit, melakukan sentrifusi hingga mendapatkan hasilnya secara langsung meggunakan grafik atau alat khusus. Hal tersebut sesuai dengan pendapat Frandson (1992) bahwa penetapan nilai hematokrit dilakukan dengan cara mengisi tabung hematokrit dengan darah yang diberi zat agar tidak menggumpal, kemudian dilakukan sentrifusi sampai sel-sel menggumpal di bagian dasar. Nilai hematokritnya kemudian dapat diketahui secara langsung ataupun secara tak langsung dari tabung itu. Berdasarkan hasil pengamatan didapatkan bahwa hasil rata-rata kadar hematokrit darah ayam sebesar 20%, kadar tersebut tidak sesuai dengan pernyataan Guyton (1989) yang menyatakan bahwa penentuan hematokrit ayam normal adalah 40-45%. Rendahnya kadar hematokrit atau Packed Cell Volume ini menandakan bahwa darah yang digunakan dalam praktikum sedang dalam keadaan tidak segar, karena kurangnya suplai oksigen dalam darah di dalam tubuh ayam.

1.4.Perhitungan Jumlah Leukosit

Berikut ini adalah hasil perhitungan jumlah leukosit dalam bilik hitung :

143

 

162

 

Bilik Eritrosit

 

152

 

165

Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2011.

Ilustrasi 2. Bilik Hitung Improve Neubauer Leukosit

4 x 10/4 x 20 x 622  = 7.775

16

 

Jumlah leukosit (L) = 143 + 162 + 152 + 165 = 622

 
   

 

 

Berdasarkah hasil praktikum didapatkan hasil jumlah leukosit sebanyak 7.775 buah leukosit. Hal ini sesuai dengan pendapat Pearce (1995) yang menyatakan bahwa dalam setiap milliliter kubik darah terdapat 6000 sampai 10.000 (rata-rata 8.000) sel darah putih. Sel darah putih atau leukosit tidak berwarna, bersifat bening dan bentuknya tidak tetap seperti amoeba. Jumlah sel leukosit dibawah eritrosit dan bervariasai tergantung dari jenis hewannya dan mengalami fluktuasi. Hal ini sesuai dengan pendapat Dellmann dan Brown (1989) yang menyatakan bahwa fluktuasi dalam jumlah leukosit pada tiap individu cukup besar pada kondisi tertentu, misalnya stress, aktifitas fisiologis, gizi, umur dan lain-lain.

1.5.Perhitungan Jumlah Erithrosit

Berikut ini adalah hasil perhitungan jumlah erithrosit dalam bilik hitung:

39

 

 

 

36

 

 

 

 

 

 

 

40

 

 

 

 

 

 

 

39

 

 

 

36

Sumber : Data Primer Praktikum Fisiologi Ternak, 2011.

Ilustrasi 3. Bilik Hitung Improve Neubauer Leukosit

 

Jumlah eritrosit (E)  =  39 + 36 + 40 + 39 + 36 = 190

50 x 200 x E = 10.000 x E = 10.000 x 190 = 1.9000.000 buah erithrosit

Berdasarkan hasil praktikum diperoleh data jumlah eritrosit dari darah ayam sebanyak 1.900.000 buah eritrosit yang menunjukkan bahwa ayam dalam kondisi kurang baik karena jumlah eritrosit dibawah standar yaitu sekitar 2,0-3,2 x 106/mm3. Hal ini sesuai dengan pendapat Mangkoewidjojo dan Smith (1988) yang menyatakan bahwa kadar normal jumlah eritrosit pada ayam adalah 2,0-3,2 x 106/mm3. Eritrosit akan rusak jika masa tumbuhnya lebih dari 120 hari. Hal ini sesuai dengan pendapat Dellmann dan Brown (1989) yang menyatakan bahwa secara normal jangka hidup eritrosit berkisar antara 120 hari, setelah jangka hidupnya habis maka akan rusak dan dikeluarkan dari peredaran darah. Eritrosit tua biasanya hancur dalam limpa, sum-sum tulang dan hati. Zat besi dari hemoglobin dirombak dan digunakan untuk membentuk eritrosit baru.

 

BAB III

SIMPULAN DAN SARAN

3.1.      Simpulan

Darah terdiri dari sel darah dan plasma, yang meliputi eritrosit, leukosit dan trombosit. Fungsi darah yaitu sebagai transport dari bahan yang larut, penghantar sinyal, penyangga atau buffer, pertahanan dan mempunyai peranan masing-masing. Jumlah leukosit ayam sampel berada di bawah normal. Penurunan jumlah leukosit dapat terjadi karena pengaruh fisiologis dan patologis yang dapat disebabkan oleh proses respon terhadap gangguan penyakit. Jumlah eritrosit yang rendah pada ayam sampel kemungkinan disebabkan karena adanya penyakit, dalam hubungannya dengan fungsi eritrosit sebagai pengangkut oksigen. Kadar hemoglobin pada ayam rendah yang kemungkinan disebabkan karena kondisi lingkungan dan ransum yang deberikan. Nilai hematokrit pada ayam rendah. Nilai hematokrit dapat depengaruhi oleh status gizi, jenis kelamin, umur dan aktivitas fisik.

 

3.2.      Saran

Tempat laboratorium sebaiknya diberikan fasilitas yang lebih memadai agar dalam proses praktikum. Fasilitas seperti air keran diharapkan ada untuk menunjang kegiatan praktikum yang akan berlangsung. Hendaknya juga ada perluasan tempat praktikum yang bertujuan agar praktikan nyaman dan teratur.

 

DAFTAR PUSTAKA

Dellmann, H. D., Esther, M. B., 1989. Buku Teks Histologi Veteriner. Jakarta, Penerbit Universitas Indonesia Press

 

Frandson R.D. 1992. Anatomi dan Fisiologi Ternak. Yogyakarta, Gadjah Mada University Press.

 

Guyton, A.C., 1989. Buku Teks Fisiologi Kedokteran. Jakarta, Penerbit Buku Kedokteran EGC.

 

Mangkoewidjojo, S. dan J. B. Smith. 1988. Pemeliharaan, Pembiakan dan Penggunaan Hewan Percobaan di Daerah Tropis. Universitas Indonesia Press, Jakarta.

 

Pearce, E., 1995. Anatomi dan Fisiologis Untuk Paramedis. Jakarta, Gramedia Pustaka Utama.

 

Subowo. 2009. Histologi Umum. Jakarta, Sagung Seto.

Ikuti

Get every new post delivered to your Inbox.

Bergabunglah dengan 167 pengikut lainnya.